Леща рыба: состав рыбы, полезные свойства и вред, приготовление леща

состав рыбы, полезные свойства и вред, приготовление леща

Лещ – представитель семейства карповых, достигающий в длину 70 см, а вес рыбы может превышать 8 кг.

Места обитания леща

Лещ прекрасно приспосабливается, поэтому рыба проживает в глубоких природных и искусственных водоемах. Лещ живет на дне, в частности, предпочитает протоки, заводи, глубокие естественные ямы, карьеры с мягким дном.

Интересно знать! Во время зимы браконьеры через прорубь извлекают из воды целые семейства лещей, которые предпочитают зимовать кучно, скрываясь в глубоких ямках.

Лещи могут жить и в высыхающих водоемах, в которые отдают предпочтение зонам с водной растительностью. Водятся в Европе, Азии и Америке.

Состав филе леща

В состав леща входят важные компоненты, участвующие в процессах метаболизмах. В 100 г филе леща содержится около 220 мг фосфора, 250 г калия и 165 г хлора. Также из состава вкусной рыбы наш организм получит:

• Микроэлементы: магний, кальций, никель, натрий.
• Витамины: А, С, В, Е, Д.
• Аминокислоты, в том числе Омега-3 и Омега-6.

Интересно знать! По жирности лещ уступает только белуге. В филе рыбы из питомника около 9% жиров. В мелкой же рыбе мякоть суховата и наполнена костями, что значительно снижает ее ценность. Наиболее полезным считается лещ, выловленный осенью в азовском море.

Также в рыбе содержится около 20% белка, что позволяет употреблять леща во время диет и занятий спортом.

Полезные свойства филе леща

Во время термической обработки филе леща теряет кислоты Омега-3 и 6, поэтому рыбку стоит готовить на пару, гриле или в качестве питательного бульона. Но все это не так важно по сравнению с полезным воздействием, которое мякоть леща оказывает на организм:

• Укрепляет мышечный корсет из-за высокого содержания белка.
• Кислоты Омега-3 и 6 способствуют нормальной работе ЖКТ, поддерживают организм, перенесший тяжелое заболевание или травму.
• Жир леща тоже очень полезен: он очищает сосуды, особенно если употреблять его в чистом виде.
• Содержание витамина Д и А позволит избавиться от проблем с низким зрением, а также побороть детский рахит. К тому же витамин Д способствует укреплению волос и ногтей, что придется по душе каждой красавице.

Важно! Представители института питания РФ заявляют, что жирные кислоты Омега-3 и Омега-6, в избытке содержащиеся в леще, расщепляют холестериновые бляшки. Нет бляшек – нет ишемической болезни сердца и ожирения. Поэтому лещ считается одним из самых полезных видов рыбы.

Вред леща

Лещ рыба безобидная, но от нее стоит отказаться людям, страдающим от аллергии на рыбу и морепродукты. А если вы даете леща малышу до 5 лет, то рыбу стоит тушить не менее 1-1,5, чтобы кости размягчились и не нанесли вреда ребенку.

Лещ в кулинарии

Существует более 50 способов приготовления леща, ведь его запекают под сыром и оливковым маслом, добавляют ароматную зелень и приправы. Также хорош лещ в качестве ингредиента для охотничьей ухи: он придаст блюду нужную жирность.

Совет! Запекая леща, не отделяйте от него голову: положите в жабры 2 дольки чеснока, сбрызните тушку лимонным соком, а внутрь рыбки положите натертый на терке сыр. Все, выложите на противень и через 30-40 мин. блюдо готово. Подавайте запеченного леща с бокалом белого вина и дольками лимона, которые скроют «рыбный аромат».

Также из леща вы можете приготовить:

• Рыбные котлеты или пельмени, провернув разрезанную тушку леща 2 раза в мясорубке. Из полученного фарша можно готовить!
• У вас остались головы леща? Сварите из них уху, с добавлением черного перца, соли и свежей зелени.
• Лещ по-охотничьи — это лещ, запеченый сразу после вылавливания из водоема в фольге на решетке.

Совет! Предварительная подготовка рыбы к приготовлению заключается в удалении чешуи и жабр.

Чтобы легко снять чешую предварительно натрите рыбу солью.

Как выбрать и хранить леща?

Выбирая леща, обратите внимание на его внешний вид:

• Жабры и тушка без слизи.
• «Влажные» глаза и чешуя. Сухая чешуя свидетельствует о том, что рыба хранится вне водоема в течение 3-4 дней.
• Лещ пахнет водой, но тухлый резкий аромат свидетельствует о старости и низком качестве рыбы.
• Самый вкусный лещ весом от 1 до 2 кг, мелкие особи костистые, а большие – слишком жирные.

Свежего леща можно хранить в холодильнике на протяжении 2-3 дней, очищенным от жабр и чешуи. В морозильной камере очищенную рыбу хранят от 1 до 4 мес.

Рыба лещ. Калорийность леща



Свойства рыбы лещ

Пищевая ценность и состав | Витамины | Минеральные вещества

Сколько стоит рыба лещ ( средняя цена за 1 кг.)?

Москва и Московская обл.

40 р.

 

Молодые особи пресноводной рыбы лещ, которая относится к семейству карповых, называют подлещиками, а старые — чебаками. Обитает эта рыба в прудах, озерах и водохранилищах, предпочитая илистое, глинистое дно и глубокие заводи. Нередко рыбу лещ специально разводят в природных и искусственных водоемах.

Рыбу лещ можно легко узнать благодаря нескольким отличительным признакам. А именно — сплющенному телу, небольшой голове и рту, высокому и не слишком широкому спинному плавнику, а также бороздке с чешуйками по его сторонам. Эта рыба не отличается особо крупными размерами, достигая в длину до 40 сантиметров, хотя некоторые рыболовы утверждают, что им попадался на удочку и 70-ти сантиметровый лещ с чешуей размером в пятикопеечную монету.

И если даже любителю рыбной ловли с рыбой лещ улыбнется удача, не каждая особь попадет на кухню, потому что мелочь, худую и костистую, обычно не готовят. Кстати, рыбаки даже придумали такой рыбе название – “фанера”. Блюда, приготовленные из рыбы лещ, получаются поистине вкусными и сочными, если рыба весит больше 1,5 килограммов. К тому же калорийность леща напрямую связана с ее массой – чем она крупнее, тем выше ее питательная ценность.

Для того чтобы в полной мере получить гастрономическое удовольствие от вкушения разнообразных блюд на основе рыбы лещ, необходимо провести подготовительную обработку этого продукта. Заключается она в потрошении, чистке и удалении жабер. Причем почистить эту рыбу весьма не просто, в связи с тем, что у нее довольно жесткая чешуя, которую для облегчения удаления советуют сначала натирать солью. Наконец-то, избавившись от чешуи, вырезаем жабры, не забывая тщательно промыть тушку под холодной проточной водой. Да, и помните, надрезы по всему телу рыбы лещ просто необходимы, потому что именно благодаря этому приему многочисленные мелкие косточки в процессе термической обработки размягчаются.

К наиболее популярным способам приготовления рыбы лещ относят запекание и обжаривание с другими продуктами, будь то различные овощи или приправы. К тому же благодаря относительно невысокой калорийности леща такое сочетание продуктов позволяет наслаждаться этой рыбой и приверженцам диетического питания. Улучшить вкус рыбы помогают специи: чеснок, хмели-сунели, шалфей, лавровый лист, розмарин прекрасно сочетаются с данным продуктом. Очень вкусным и необычным блюдом, в состав которого входит рыба лещ, многие хозяйки называют рыбный рулет, для приготовления которого используется исключительно филе рыбы.

А вот рыба лещ, запеченная в фольге, несомненно, смотрится на праздничном столе изыскано и необычно. К тому же именно такой способ приготовления является традиционным блюдом русской кухни. Фольга заменяет русскую печь, и рыба лещ, приготовленная таким образом, получается значительно нежнее и сочнее.

Калорийность рыбы лещ 105 кКал

Энергетическая ценность рыбы лещ (Соотношение белков, жиров, углеводов — бжу):

Белки: 17.1 г. (~68 кКал)
Жиры: 4.4 г. (~40 кКал)

Углеводы: 0 г. (~0 кКал)

Энергетическое соотношение (б|ж|у): 65%|38%|0%

Рецепты с рыбой лещ



Пропорции продукта.

Сколько грамм?

в 1 штуке 4500 граммов

 

Пищевая ценность и состав рыбы лещ

НЖК — Насыщенные жирные кислоты

0.9 г

Холестерин

55 мг

Витамины

Минеральные вещества

Аналоги и похожие продукты

Просмотров: 14140

Блюда из леща — рецепты с фото на Повар.ру (34 рецепта леща)

Лещ горячего копчения 5.0

Если вы приобрели леща, обязательно закоптите. Эта рыбка горячего копчения никого не оставит равнодушным. Сочная, со вкусом «дымка», надолго запомнится и ее захочется приготовить еще раз. Делюсь! …далее

Добавил: Кристина 26.08.2020

Лещ в фольге 3.

4

Предлагаю простой рецепт приготовления леща в фольге. На все про все у вас уйдет полчаса. Противень не запачкаете, мариновать ничего не надо. Просто добавьте к лещу специи и отправляйте в духовку. …далее

Добавил: DianaV 25.01.2014

Уха из леща 3.9

Приготовить уху из леща сможет каждый — это просто и быстро. Уху можно подать на обед, а можно ею и поужинать. Помимо леща, понадобятся овощи и специи. Приступаем к готовке ухи из леща дома! …далее

Добавил: DianaV 23.04.2014

Жареный морской лещ с зеленью 3.7

Сегодня на ужин — пан Лещ. Приготовления блюда не составит особого труда и не займет много времени. В качестве гарнира к запеченной рыбе нарвем побольше зелени. Дайте по лещу всем своим гостям! …далее

Добавил: MeItaliano 06.10.2010

Лещ с овощами 3.8

Мой любимый способ приготовления леща — это лещ с овощами. Приготовленный таким образом лещ теряет неприятный речной привкус, становится мягким и сочным. …далее

Добавил: Павел 22.09.2012

Лещ копченый 3.6

Если у вас имеется в доме коптильня, то этот рецепт подойдет для вас. Лещ копченый в домашних условиях получается очень вкусный и ароматный. …далее

Добавил: Юлия Мальченко 24.04.2015

Лещ с гречневой кашей 3.9

Лещ с гречневой кашей — замечательное блюдо для всех любителей рыбки. Блюдо очень просто готовится и является универсальным горячим, которое можно подавать как на обед, так и на ужин. …далее

Добавил: Zoskyn 05.04.2013

Рыбный суп из леща 4.2

На пикнике или к обеденному столу этот простой рецепт рыбного супа из леща будет как нельзя кстати. Любителям несложных и вкусных блюд обязательно стоит взять его на заметку. …далее

Добавил: Марина Золотцева 16.05.2018

Лещ с грибами 4.6

Лещ — одна из моих любимых рыб. А лещ с грибами, приготовленный в духовке — это просто предел мечтаний. Филе рыбы всегда получается мягким, а грибы придают своеобразный вкусовой оттенок. …далее

Добавил: Zoskyn 11.04.2013

Балык из леща 4.

1

Если вы любите балык так же, как я, то с радостью поделюсь секретом, как приготовить балык из леща в домашних условиях таким образом, чтобы он ничуть не уступал аналогичным магазинским деликатесам! …далее

Добавил: Елена Alex 22.01.2016

Котлеты из леща 4.6

Простой рецепт котлет из леща пригодится любой хозяйке, а не только жене рыболова-любителя. Вкусные, ароматные и сытные котлетки из леща — то, что нужно на обед. …далее

Добавил: Марина Щербакова 29.12.2013

Лещ в духовке 3.7

Лещ в духовке получается восхитительным — ароматным, пряным, сочным. Подавайте его с овощами и лимончиком — на праздничный стол или в будни. Это — не только вкусное, но и полезное блюдо. …далее

Добавил: DianaV 26.01.2014

Лещ жареный 3.7

Лещ жареный — очень простое в приготовлении и очень вкусное блюдо, к которому можно подать практически любой соус или гарнир. Рыба прожариться в течение 15 минут. Попробуйте приготовить леща дома! …далее

Добавил: DianaV 13.10.2014

Лещ в мультиварке 3.5

Лещ в мультиварке будет готов уже через минут 20, включив режим «Жарка», можно его готовить и на «Выпечке». Мясо у леща получается сочным, нежным, а корочка поджаристой. Обязательно попробуйте! …далее

Добавил: DianaV 29.01.2014

Вяленый лещ 3.7

Приготовить в домашних условиях вяленого леща — дело непростое. Понадобится балкон или подвал, терпение и, по истечению 7-14 суток, пиво. Рыбка, правда, получается очень вкусной. Пробуем! …далее

Добавил: DianaV 29.01.2014

Маринованный лещ 4.3

Маринованный лещ — отличная закуска на праздничный стол и прекрасное дополнение к отварному или жареному картофелю с укропом. Маринуется лещ с луком в течение суток. Рецепт маринования — простой. …далее

Добавил: DianaV 30.01.2014

Фаршированный лещ 3.6

Фаршированный лещ можно приготовить в сковороде, на гриле или в духовке. Это — вкусное и простое в приготовлении блюдо. Фаршировать нашу рыбку мы будем овощами. …далее

Добавил: DianaV 31.01.2014

Хе из леща 4.0

Хе из леща — блюдо корейско-японской кухни. По сути это — маринованная рыба с добавлением свежих или обжаренных овощей. Мы будем делать хе из леща с репчатым луком. Замаринуем леща с луком на 5 часов. …далее

Добавил: DianaV 30.01.2014

Лещ в аэрогриле 5.0

Для того, чтобы приготовить нежного и сочного внутри и хрустящего снаружи леща предлагаю воспользоваться аэрогрилем. На готовку у вас уйдет всего полчаса, а возиться совсем не придется. Приступаем! …далее

Добавил: DianaV 30.01.2014

Паштет из леща 3.8

Паштет из леща вы приготовите за 10 минут. Этот простой совет следует взять на заметку тем, к кому могут нагрянуть внезапные гости. Лещ для этого рецепта нам понадобится копченый. Подавайте с багетом. …далее

Добавил: DianaV 16. 02.2014

Рыбные котлеты из подлещика 4.7

Из речной рыбы, вроде леща или подлещика, получаются замечательные домашние котлеты. А если приготовить их в томатном соусе — так вообще пальчики оближешь. Рекомендую на обед или ужин! …далее

Добавил: Алексей Марчук 02.06.2015

Копчение леща в коптильне 4.0

Любите копчёную рыбку? Здесь я расскажу, как закоптить леща в коптильне дома. Для этого вам понадобится, собственно, коптильная и несколько рыбок. Результат превосходит все ожидания! …далее

Добавил: Ju Lia 05.05.2017

Лещ в духовке в фольге 3.6

Поймали жирного красивого леща и не знаете, что с ним делать? Берите фольгу и запекайте в духовке! Элементарной простой рецепт приготовления леща в духовке, с которым и дети справятся, смотрите сами! . ..далее

Добавил: Марина Щербакова 15.08.2016

Копченый лещ 4.1

Если вы хотите удивить друзей, то пригласите их за город для того, чтобы угостить копченым лещом собственного приготовления. Ароматный, с темно-бронзовым отливом, он никого не оставит равнодушным. …далее

Добавил: Ольга Макарова 22.09.2016

Лещ, запеченный в духовке 4.2

Сегодня приобрел на рынке крупного свежего леща, уж очень рыбы захотелось. Решил его запечь в фольге и похвастаться своими результатами. Расскажу, как приготовить леща, запеченного в духовке. …далее

Добавил: Антон Сорока 19.02.2017

Лещ на мангале 5.0

На приготовление леща на мангале уходит очень мало времени. Его сладковатое мясо, приправленное дымком, поистине вкусовое наслаждение. Уверена, что его оценят многие. Делюсь простым рецептом! …далее

Добавил: Кристина 21.08.2020

Лещ, запеченный под майонезом 5.0

Лещ — белая рыба с вкусным сладковатым мясом. Его можно пожарить на сковороде или запечь в духовке. Мне больше нравится лещ запеченным. Под майонезом он получается очень сочным и ароматным. …далее

Добавил: Дарья Вакулова 03.04.2018

Лещ в сметане в духовке 5.0

Рыба и сметана как будто созданы друг для друга, настолько гармонично сочетание этого кулинарного дуэта. Готовьте таким образом любую рыбу, например, леща, как в в этом рецепте. …далее

Добавил: Galina.budanova 16.08.2019

Лещ с картошкой в духовке 5.

0

Предлагаю разнообразить рыбные блюда и приготовить леща с картошкой в духовке. Потратив немного свободного времени, в результате вы получите отменное блюдо, которое достойно праздничного стола. …далее

Добавил: Кристина 22.09.2020

Лещ в духовке с картофелем 5.0

Лещ — хорошая речная рыба, которую чаще всего вялят и коптят. Неплохой получается из леща уха. Но попробуйте запечь его в духовке с картофелем. Получите отличный ужин для всей семьи. …далее

Добавил: Зоя Шунина 03.09.2020

Лещ в духовке в рукаве 4.7

Лещ — речная, озерная, пресноводная рыба. Особой популярностью пользуется вяленый или копченый лещ. Но сегодня мы запекаем его в духовке, в рукаве. Получим отличный ужин с любым гарниром. …далее

Добавил: Зоя Шунина 25.04.2021

Лещ с капустой запеченный в духовке 5.0

Приготовьте в духовке леща с капустой. Запечённая рыба получается вкусной и ароматной. Берите на заметку рецепт! …далее

Добавил: Isaenko777 02.12.2021

Лещ в духовке с чешуей 5.0

Красочное рыбное блюдо можно приготовить и без особых усилий, вам даже не придется чистить леща, так как вы можете запечь его вместе с чешуей! Используйте горчицу или лимонный сок для маринования. …далее

Добавил: AlenaPrika 09.09.2021

Лещ в соли в духовке 5.0

Самый простой вариант приготовления леща без чистки — запекание в соли. Не переживайте, рыба возьмет столько соли, сколько нужно, не становясь слишком соленой. Внутрь рыбы можно добавить лимон. …далее

Добавил: AlenaPrika 22.06.2021

Лещ

Лещ – рыба, известная повсеместно на территории страны. Он обитает практически во всех реках и озерах нашей необъятной родины. Лещ является ценной рыбой для заготовительного промысла, его мясо считается одним из самых жирных, среди пресноводных рыб.

Познакомимся поближе

Лещ относится к семейству карповых (Cyprinidae). Средний размер взрослой особи колеблется от 30 до 40 см, а вес о 1 до 3 кг, хотя встречаются особи до 70 см в длину и весом до 5 кг. Тело выраженно-плоское и высокое, примерно 30% от длины. Рыба имеет маленькую голову, полунижний выдвижной рот, который, вытягиваясь, образует трубку. У леща высокий спинной плавник, хотя при своей высоте он очень короткий, анальный плавник в два раза его длиннее. Хвостовой плавник имеет глубокий, большой вырез и верхняя лопасть у него несколько короче, нежели нижняя. Общая окраска тела у лещей серебристая, а верхняя часть боков, вся спина и голова черновато-серые, брюхо практически белое. Стоит заметить, что у рыб, обитающих в озерах окраска более темная, чем у речных. Во время нереста у самцов на теле появляются желтовато-белые бугорки, а само тело на ощупь становится шероховатым. Нерест – это, пожалуй, единственное время, когда можно отличить особей женского рода от мужского. Молодых лещей называют подлещиками. Они имеют более продолговатое тело и, сравнительно со взрослыми особями, большие глаза. Их часто путают с густерой. Они отличаются лишь тем, что у лещей никогда не бывает красноватых оттенков на плавниках и более мелкой чешуей.

Места обитания

Лещ предпочитает силиться в стоячих водоемах или в равнинных участках рек, при этом выбирая сложный рельеф дна. Заиленные ямы, затопленные русла рек, различные возвышения и углубления и прочие неровности – излюбленные места обитания леща. В озерах предпочитает глубинные места, хотя выходит кормиться к камышовым и тростниковым зарослям. Лещ стайная рыба. Весной лещи образуют небольшие стаи, перед нерестом. Примерно в июле, рыба начинает сбиваться в более крупные стаи и концентрируется в особо богатых кормом местах. Особенно многочисленными стаи леща становятся к осени, перед уходом в зимовальные ямы. Летом в жару лещ большую часть времени не покидает занятые им глубины. Лишь к заходу солнца он выходит кормиться на более мелкие склоны. В ночное время выбирается на илистые мели и на другие мелководные участки водоемов. Целый день на мелях, не уходя на дно, лещи проводят в безветренные и пасмурные дни. А в сильно жаркие деньки они совсем не покидают глубин, которые облюбовали. В кормных местах у лещей практически не происходят кочевки, если им ничего не мешает, они могут все лето провести в одном месте. При недостаточной кормовой базе лещи способны мигрировать на значительные расстояния. К середине октября у лещей начинается оседлый образ жизни.

Предпочтения в еде

Питается лещ червями, ракообразными, моллюсками, личинками насекомых и прочей живностью, которая живет в грунте или другом придонном субстрате на месте обитания рыбы. В первые годы жизни лещ питается более чем 30 видами корма, к 5-6 годам он останавливается на 5-6 видах, включая растительные корма. На этом и основывается выбор приманки при ловле леща.

Брачный период

Лещ нерестится в мае. Когда температура воды составляет 10-17оС. В основном нерест проходит в протоках, заросших растительностью, на отмели, в других неглубоких местах. Обычно глубина составляет от 20 см до 2,5 м. Нерест обычно происходит в ранние часы и, бывает, занимает до трех дней. При неблагоприятных условиях, например при похолодании, может растянуться на более долгое время. На него собираются большие группы. Зачастую процесс оказывается очень шумным. Разместившись на избранном участке, производители некоторое время бесшумно плавают, как бы выбирая подходящее место для метания икры, затем начинают двигаться по кругу, диаметр которого составляет до 8 метров, при этом часто выставляют из воды спины и совершают бурные всплески. Это действо продолжается в течение нескольких часов. Более крупные самцы пытаются отбить от самок более мелких. Кстати, рыбы мужского пола оказываются на месте нереста намного раньше, чем самки. И покидают место нереста не так быстро, как молодые мамаши, те сразу уплывают в глубинные части водоемов. Икра инкубируется в течении 7 -10 дней. Затем, вылупившиеся личинки, стремясь к свету, поднимаются в верхние слои воды и прикрепляются к растениям с помощью специального секрета, который выделяется железами на голове (их еще называют «цементные железы»). Прикрепившись к растению, малек остается на нем до полного рассасывания желточного мешочка, после чего он отделяется от растения, его плавательный пузырь наполняется воздухом и молодой лещ начинает активно питаться, быстро набирая массу.

Лещ | Виды Рыб

Рейтинг:   / 1

Подробности

Просмотров: 4146

Рыба лещ

Существует два вида леща:лещ бронзовый (жилой) и лещ серебристый (полупроходной), но больший энтузиазм для рыбаков представляет все таки большой бронзовый лещ, потому что ареал серебристого леща, либо густеры, довольно ограничен.

Юный лещ имеет серебристую расцветку, темные плавники и очень сплющенное по краям плоское тело, по этому эту рыбу именуют также водорезом. с годами, также зависимо от цвета грунта и воды в водоеме расцветка леща может изменяться. юный серо-серебристый лещ весом около 1,3 кг равномерно темнеет, и его чешуя приобретает бронзовый отлив.

По мере взросления у леща изменяется и форма тела, на спине возникает горб, чешуя покрывается слизью. Соответствующий рот леща с подвижной верхней губой обосновывает, что лещ является придонной рыбой и умеет всасывать еду также хватать добычу на плаву.

Для серебристого леща тоже типично сплющенное с боков плоское тело, но его грудные и заднепроходные плавники имеют красный колер. Чтоб наверное найти, какого леща вы все-же изловили — серебристого либо бронзового, — сосчитайте количество чешуек на боковой полосы рыбы. Серебристый лещ имеет 44-48 чешуек, а бронзовый, обычно, 51-60.
Ареал

Лещ получил в Рф обширное распространение, хотя эта рыба и не любит речек с мощным течением. В текущее время лещ удачно обитает не только лишь в реках, да и в озерах, бессчетных водохранилищах и искусственных прудах. Лещи удачно плодятся в заводях рек либо в реках со слабеньким течением.

Самые большие особи леща обитают на деньке в огромных песочных ямах, при этом за крайние 20 лет их вес существенно возрос.

Леща можно повстречать и в бурных реках, где рыба приспособилась жить на глубине в илистых впадинах. Во время паводков лещи находят для себя укрытие под высочайшими берегами и очень нередко неподалеку от берега.

Сезон
В реках — с июня по март, в водоемах со стоячей водой — круглый год.

Распространение
Лещ обширно всераспространен в водоемах различных типов, кроме стремительных речек с галечным дном.

Естественное питание
Водяные улитки, личинки насекомых.

Основной совет
Взрослые лещи ведут в большей степени ночной стиль жизни, но отлично ловятся и вечерком, в особенности в тихих омутах. Больших лещей идеальнее всего ловить в черное время суток.

Размеры
Зависимо от сферы обитания лещ может достигать разной величины, но обычно средний вес данной породы рыбы составляет 4,5 кг. Наилучшим местом обитания лещей числятся песочные ямы на деньке реки, но крупную рыбу весом выше 5,5 кг удается вырастить и в огромных водохранилищах.

Хотя в реках средний вес особи, плавающей со своими сородичами косяком, составляет приблизительно 5,9 кг, истинные рыбины-великаны обитают конкретно в песочных ямах и, почаще всего, не терпят рядом с собой никакого соседства.

Поведение и индивидуальности рациона

Лещ питается придонным живым кормом — улитками, саржей, личинками насекомых и красноватыми червями-трубочниками. Рот леща отлично адаптирован к всасыванию еды со дна, потому, когда эта рыба отыскивает корм, вода нередко становится мутной, и со дна поднимаются пузырьки. Бывалые рыбаки могут на глаз найти, в котором месте может находиться свора проголодавшихся лещей.

Потому что лещи числятся представителями кочующих рыб, почаще всего в поисках еды они передвигаются косяками, и их путь можно проследить. Рыбаки-профессионалы могут даже предвещать приход своры лещей в определенное время суток в любимые места. Еще для леща типично типичное поведение — так называемое катание по воде, когда рыба высовывает голову и спинной плавник на поверхность, а потом резко ударяет хвостом, переворачивается и опять уходит в глубину.

Большие лещи, обитающие в песочных ямах, имеют заслуженную репутацию индивидуалистов, которых не так просто изловить. такие лещи без охоты реагируют на наживу, потому что обычно в водоеме для их и без того довольно еды.

Лещи не обожают очень прохладной воды, хотя ловят леща и в зимнюю пору и в летнюю пору. Большие лещи ведут, обычно, ночной стиль жизни, даже ночкой без охоты покидая свои песочные ямы, и изловить их в дневное время в особенности трудно.

шарж человека

Уважаемые посетители, мы старались создать этот сайт, абсолютно бесплатно. И у нас к вам большая просьба, в знак благодарности к нам и нашей роботе, оставьте пожалуйста один или более комментариев по данной теме. С уважением администрация Pro Fishing.

Добавить комментарий

состав, полезные свойства, приготовление мяса леща

Лещ является представителем рыб семейства карповых. Имеет высокое, поджатое с боков тело и длинные анальные плавники, между ними и хвостовыми расположен киль, чешуя отсутствует. Хвостовой плавник леща сильно выражен, как правило, его верхняя лопасть всегда короче нижней. Рот рыбы имеет полунижнее расположение, зубы однорядные, глоточные, по 5 штук с каждой стороны.

Расцветка леща может быть как свинцовой, почти черной, так и зеленоватой. Бока чуть белые и имеют жемчужный блеск, у зрелых особей блеск приобретает золотистый оттенок. Цвет плавников – серый. При максимальной длине в 75 см (в среднем 30-50 см) лещ может весить около 8 кг.

Своим широким распространением эта рыба обязана искусственному разведению. Для обитания лещ выбирает глубокие и спокойные низовья рек с хорошо прогревающейся водой и неспешным течением. Также лещи водятся в протоках, глубоких ямах, затопленных водой песчано-гравийных карьерах. Все долинные водохранилища (исключением являются форелевые) также заселены лещами. Рыба старается держаться подальше от берегов, обитая на глубинных участках в излучинах. Заросший водоем заставляет леща приживаться в гуще водяной растительности.

Состав и полезные свойства мяса леща

Лещи, особенно если это нагульные особи, выловленные осенью, обладают очень жирным (содержит до 9% жира), мягким и нежным по вкусу мясом. Даже при том, что это весьма костлявая рыба, крупные лещи по праву относятся к числу первоклассных рыбопродуктов. Мелкие лещи имеют достаточно сухое мясо и множество косточек. Самыми крупными являются лещи, которых вылавливают осенью на Азове.

По показателям жирности лещ уступает только белуге – это самая жирная рыба. Так как жир леща очень полезен – его не обрабатывают. С его помощью замечательно чистятся сосуды. Рыбий жир, содержащий кислоты Омега-3, уменьшает уровень холестерина в крови, и способен растворять холестериновые бляшки, уменьшая возможность развития гипертонии, ишемической болезни сердца и получения инсульта. Кроме индивидуальной непереносимости встречающейся довольно редко, рыбий жир показан к употреблению всем. В мясе леща есть много витаминов и содержатся необходимые человеку микроэлементы.

100 граммов мяса леща содержит порядка 104 ккал.

Вред и противопоказания к употреблению

Противопоказанием является индивидуальная непереносимость и наличие аллергии на мясо леща.

Приготовление блюд из леща

Тем, кто не относится к числу любителей рыбьего жира, стоит готовить леща в оливковом масле в лимонно-апельсиновом соусе. Приготовленная таким образом рыба полностью сохраняет весь накопленный жир.

Для этого нужно нарубить укроп и сложить его внутрь рыбы. Затем выдавить сок из одного апельсина и половинки лимона, перемешать и полить леща. Дать рыбе постоять пару часов, полить ее 2-3 ст. ложками оливкового масла, завернуть в фольгу и поставить запекать в духовой шкаф. Существует рецепт приготовления подобным образом леща, фаршированного гречневой кашей.

Для чего рыбе нужна слизь или почему лещ такой сопливый? | РЫБАЛКА С МИХАЛЫЧЕМ

Как только рыбаки порой не называют своих пойманных рыб! К примеру, про подлещика и леща можно услышать: «фанера» и «сопливый». Хоть последнее прозвище, в большей степени и относится к ершам, но в обиходе встречается довольно-таки часто.

Гроза всех любителей ловли леща ))

Гроза всех любителей ловли леща ))

Все, кто ловилихоть раз в своей жизни леща летом, сто процентов замечали, что рыба порой покрыта самым настоящим слоем слизи. Которая остается на руках, на одежде и, конечно же, на снасти, в первую очередь на поводке.

На этой фотографии отчетливо видно, сколько слизи собралось на леске…

На этой фотографии отчетливо видно, сколько слизи собралось на леске…

Но на самом деле ничего удивительного тут нет и очень многие рыбы имеют такое покрытие, особенно обильно оно в летнее время года, когда идет бурный рост всевозможной зелени в воде. Служит оно не только в качестве смазки для уменьшения трения в воде, но и в других, более важных целях.

Слизь создает у рыб на поверхности чешуи изолирующий слой, который препятствует проникновению бактерий, паразитов и микроорганизмов на кожу. Так же она способствует быстрой сворачиваемости крови, защищает и регенерирует поврежденные участки кожи.

На сетке подсачья слизи тоже остается неимоверно много и отмывать его потом замучаешься!

На сетке подсачья слизи тоже остается неимоверно много и отмывать его потом замучаешься!

Вот, на самом деле и вся причина повышенной сопливости леща, за что и наградили его не самым приятным прозвищем «сопливый». Просто в отличии от других популярных видов рыб, у него слизистый покров больше, что может быть обусловлено его образом жизни в придонных слоях и на большой глубине.

Кстати, бытует мнение, что если после вываживания эту слизь не убирать с поводка, то крупная рыба вряд ли у Вас клюнет. Поэтому не боясь испачкать руки всегда счищаем ее с лески, ну и не забываем отправляясь на рыбалку за лещом брать полотенце!!! Мне больше всего по душе махровые ))

Еще одна заметка по теме леща — Прикормку кашей не испортишь! Или испортишь?

Лещ (Abramis brama) — Ирландский комитет по рыбным образцам

НОВЫЙ РЕКОРДНЫЙ ЛЕЩ: 6,07 кг Ballywillan Lough Fisheries, Co. Down, 24 июня 2012 г. — Брайан Робинсон

Вес образца: 3,4 кг (7,5 фунта).
Рекордный вес: 12 фунтов 3 унции, озеро Болганард, 1997 г.

Лещ — один из самых распространенных видов крупной рыбы в Ирландии. Они варьируются от относительно небольшой канальной рыбы (хотя крупные экземпляры можно поймать на участках известнякового канала) до мелководной рыбы Шеннона, иногда в среднем превышающей 5 фунтов каждая, до небольших групп особей в известняковых бухтах, где особи могут превышать 10 фунтов.

Особенности:

Взрослых легко узнать по бронзовому оттенку, черным плавникам и выступающей верхней челюсти. Неполовозрелых лещей называют «скиммерами», и они отличаются от взрослых своей серебристой окраской.

Спаун:

Лещ достигает половой зрелости в возрасте 7-10 лет. Нерест происходит с середины мая до середины июня, когда температура воды достигает 15°C. Яйца размером 1,6-2 мм откладывают в заросли сорняков на мелководье.

Плодовитость:

Средний взрослый лещ производит 30 000-40 000 икринок/кг.Продолжительность жизни (возраст): Лещ может жить около 25 лет.

Диета:

Естественный рацион взрослых особей состоит в основном из личинок хирономид и ручейников, гаммарусов и донных беспозвоночных.

Лучшие методы рыбалки:

Поплавочная ловля ваглерами, полярисами и другими поплавками; гроссбух с арселей-бомбами и кормушками; длинный шест в руке или короткая веревка.

Лучшие приманки:

Личинки, черви, хлеб, литейщики, сладкая кукуруза и т. д. с коричневой крошкой и рядом континентальных прикормок и ароматизаторов.

Лучшее время для ловли леща
января	февраля	Mar	апреля	мая	июня	июля	августа			октября	ноября	декабря
						★	★★	★★	★	★	★	★★	★★
Примечание: ★ Хорошее время для ловли леща      ★ ★ Очень хорошее время для ловли леща

Крэппи против леща: различия между краппи и лещом

Крэппи против леща

Любой, кто когда-либо ловил пресноводную рыбу в нескольких местах по всей территории США, вероятно, заметил, что существует множество взаимозаменяемых терминов для многих видов, населяющих страну.Возможно, один из самых популярных видов рыб — и один из самых названных — это семейство солнечных рыб.

Краппи против леща

Известные под своим научным названием Centrarchidae, солнечники являются одними из самых популярных промысловых рыб в стране, а черный окунь, каменный окунь, синежаберный и краппи очень популярны для ловли.

Кроме того, у каждого члена семейства солнечных рыб есть свой набор подвидов, например, есть как белый, так и черный краппи.

В пределах видов Centrarchidae есть несколько подвидов, обычно принадлежащих к родам Lepomis и Ennecanthus, что приводит к десяткам различных солнечных рыб, которые часто имеют уникальные названия в зависимости от того, где они находятся.

Одним из терминов, часто используемых для описания некоторых видов солнечных рыб, является рыба-лещ. На самом деле, вы слышали, как рыболовы называют многие виды солнечников рыбой-лещом, что приводит к изрядной путанице в отношении того, к чему именно относится этот термин!

Разница между краппи и лещом

Основное различие между лещом и краппи заключается в том, что термин лещ обычно относится к синежаберным рыбам. Эти термины часто меняются местами, потому что синие жабры и краппи имеют много общего в физическом плане, поскольку оба являются частью семейства солнечных рыб.

В результате, большинство людей, говорящих о леще, на самом деле имеют в виду синежаберных рыб, которые имеют примерно одинаковую форму и размер, имеют сходные спинные плавники и часто имеют одинаковые типы узоров на теле.

Цвета синежаберных и краппи заметно различаются, однако синие жабры имеют темно-зеленоватый цвет в сочетании с коричневым и оранжевым Gi, а также синие жабры, в честь которых они названы.

Краппи, как правило, имеют более светлые зеленоватые тона на теле, в то время как белые краппи имеют темные полосы на плавниках, тогда как черные краппи имеют черные пятна.Краппи также часто вырастают немного больше, чем бимсы, хотя и всего на несколько дюймов.

Конечно, это всего лишь сравнение одного вида леща с краппи, так как этот термин в просторечии используется для обозначения любого вида солнечной рыбы.

Зачем рыба-луч?

Происхождение термина «рыба-луч» неизвестно, хотя он в основном используется в южных регионах США. При ловле рыбы на юге нередко можно услышать, как любую солнечную рыбу, от краппи до синежаберных, называют лещом.

На самом деле, есть определенные управляющие агентства, которые используют лещ как собирательный термин для всех солнечных рыб, подчеркивая, насколько распространен этот термин в этих частях страны. Интересно, что в Европе есть вид пресноводной рыбы, который официально известен как обыкновенный лещ — конечно же, он не имеет отношения к нашей родной солнечной рыбе!

Таким образом, вы можете обнаружить, что большинство людей, которые используют термин рыба-лещ, имеют в виду синежаберных или аналогичных представителей семейства солнечных рыб. В редких случаях краппи часто называют лещами, хотя это чаще встречается в некоторых южных регионах Соединенных Штатов.

Родственный:

убийств рыб и здоровье водных животных | Колледж сельского хозяйства, лесоводства и биологических наук

Рыба в прудах может погибнуть по нескольким причинам. См. разделы ниже, чтобы узнать, что может быть причиной проблем со здоровьем ваших рыб.

Крупная рыба умирает, но мало мелкой рыбы или рыбы всех размеров и видов

Крупная рыба более восприимчива к условиям с низким содержанием кислорода и оборотам, чем мелкая рыба.Когда происходит оборот или недостаток кислорода, крупная рыба всплывает на поверхность и начинает умирать раньше, чем мелкая. По мере ухудшения ситуации с низким содержанием кислорода мелкие рыбы выходят на поверхность, и их можно увидеть задыхающимися и дышащими в тонком слое воды на поверхности. Низкий уровень кислорода чаще всего происходит непосредственно перед восходом солнца, потому что уровень кислорода в это время дня самый низкий. Фотосинтеза не происходит, потому что нет солнечного света, а планктон и микробы в воде все еще дышат и потребляют кислород.В результате уровень кислорода снижается в течение ночи, а первые признаки кислородного голодания обычно проявляются ранним утром. К полудню в результате фотосинтеза в воде может быть достаточно кислорода, чтобы удовлетворить потребности рыб. Низкий уровень кислорода является наиболее вероятной причиной гибели рыбы в ливневых прудах.  Связанная с кислородом гибель рыбы чаще всего происходит осенью, когда штормы и ветреные дни вызывают быструю «перемену», но она также может произойти в любое время в течение вегетационного периода, если происходит интенсивное цветение водорослей.

Как предотвратить гибель рыб из-за недостатка кислорода?
Циркуляция воды. Циркуляция воды предотвращает расслоение пруда (установление термоклина) и образование на дне слоя воды с низким содержанием кислорода. Инструкции см. в разделе «Аэрация и циркуляция». Следует подчеркнуть, что пруды с ливневыми стоками не предназначены для идеальной среды обитания рыб. Они предназначены для управления ливневыми водами, и тот факт, что они могут укрывать рыбу, является второстепенным преимуществом. Учитывая, что в ливневых прудах наблюдаются длительные периоды стоячей воды, прерываемые короткими периодами быстрого перемешивания во время дождя, они более подвержены обороту и гибели рыбы с низким содержанием кислорода, чем более крупные озера и частные рыбные пруды.

Умирает только мелкая рыба, но не крупная

Мелкие рыбы более восприимчивы к токсинам, чем крупные. Если предположить, что в пруду есть как мелкая молодь, так и крупная половозрелая рыба, гибель рыбы, которая влияет только на молодь, в то время как более крупная взрослая рыба не затрагивается, часто указывает на то, что в воде присутствует какая-то форма токсина. Токсины могут возникать в результате неправильного применения пестицидов, выброса незаконных стоков (например, растворителя или автомобильной жидкости) в систему ливневой канализации или цветения сине-зеленых (цианобактерий) или красных водорослей. Цветение цианобактерий обычно заметно, потому что вода становится мутной и зеленой, как гороховый суп, или образует ярко-зеленую или красную поверхностную пленку. (См. раздел о планктонных водорослях.) На изображении справа показано интенсивное цветение цианобактерий с многочисленными мелкими рыбками, которые были убиты токсином микроцистина, выделяемым водорослями.

Как бороться с токсинами в пруду?
Несмотря на источник, удалить токсин из воды после того, как он был введен, практически невозможно.Хитрость в управлении гибелью рыбы, связанной с токсинами, заключается в том, чтобы предотвратить попадание токсина в систему, главным образом, путем информирования жителей о надлежащем использовании удобрений и пестицидов и надлежащей утилизации бытовой химии и автомобильных жидкостей. Ливневые пруды во многом зависят от качества стока, который стекает с дорог и газонов по соседству. Сообщества должны проявлять бдительность в отношении незаконных сбросов в ливневые стоки и пруды и сообщать о вопиющих нарушениях в местный отдел ливневых стоков или общественных работ. Если предположить, что взрослая рыба не погибла, популяция рыб должна восстановиться после того, как токсин покинет организм. В некоторых случаях может потребоваться пополнение пруда.

Я вижу умирающую рыбу только одного вида, или рыба выглядит больной или зараженной паразитами

Дифференциальная гибель только одного вида рыб может быть результатом условий окружающей среды, таких как недостаток кислорода, болезнь или паразит. Некоторые виды рыб более восприимчивы к низкому содержанию кислорода, чем другие. При умеренном низком уровне кислорода несколько особей одного вида могут погибнуть без каких-либо симптомов у других рыб, но событие обычно происходит внезапно и недолго, а мертвые особи являются самыми крупными из этого вида.Когда причиной являются болезни или паразиты, смерть обычно происходит спорадически в течение длительного периода времени и затрагивает все возрастные группы вида. Несколько рыб умирают в один день, еще несколько дней спустя, и в течение месяца или двух может произойти много случаев смерти. В отличие от убийств с низким содержанием кислорода, смерть от болезни или паразита обычно сопровождается другими симптомами, такими как выпученные глаза, изменение цвета кожи или жабр, признаки небольших ран или некроза, внешние паразиты, цепляющиеся за кожу или жабры, и так далее.Болезни рыб и паразиты обычно не являются серьезной причиной гибели в прудах с ливневыми стоками, отчасти потому, что рыба редко достигает плотных популяций в этих системах, а вода регулярно меняется с каждым проходящим штормом. Если вы подозреваете, что рыба в вашем пруду заражена болезнью или паразитами, обратитесь за советом в свой офис расширения или местный отдел рыболовства в Департаменте природных ресурсов Южной Каролины.

СК ДНР Отдел рыбного хозяйства

• Чарлстон (843) 953-5291 
• Клемсон (864) 654-1671 
• Колумбия (803) 734-3886
• Флоренция (843) 661-4766 

Я вижу рыбу с ранами и шрамами

Рыбы часто становятся жертвами хищников и даже могут поедать себе подобных. Некоторым рыбам посчастливилось избежать нападения, но они остались шрамами от столкновения. Наиболее распространенными хищниками, которые рубят рыбу в ливневых прудах, являются скопы, чайки, цапли, белые цапли, бакланы и змеешейки, аллигаторы, черепахи и выдры. Эти животные иногда удаляют чешуйки, оставляют царапины и колющие раны, а также обрезают или рвут плавники, пытаясь поймать рыбу. Рыбы также могут получить раны от лежания. Это наиболее заметно в виде покраснений или шрамов на губах и нижней части хвостового плавника.

Весенняя гибель леща
Весной своеобразный тип гибели чаще всего происходит с крупным лещом, хотя может случиться и с другими видами. В марте или начале апреля жители прудов могут сообщать о нескольких крупных лещах с большими зияющими ранами на боках, но они редко видят более 10 рыб на акр с такими симптомами. Этот тип убийства, скорее всего, является результатом зимнего стресса и каннибализма. Зимой пищевые ресурсы ограничены, и рыбы испытывают стресс и недоедают. Больше всего это влияет на самого крупного леща. Весной с потеплением рыбы становятся более активными и иногда нападают друг на друга. Клевание в сочетании с недоеданием делает рыбу уязвимой для инфекции и некроза, что в конечном итоге побеждает их. Этот тип гибели леща чаще встречается в переполненных прудах. Если вы получаете сообщения о том, что ранней весной небольшое количество крупных лещей умирает от крупных ран, это, вероятно, связано с каннибализмом. Это пройдет с наступлением весны и не окажет существенного влияния на популяцию рыб.

Я вижу искалеченную рыбу или скелеты на берегу

Искалеченная рыба и кости на берегу почти всегда указывают на выдру. Большинство других хищников либо проглатывают рыбу целиком (аллигаторы, цапли), либо забирают рыбу из пруда для кормления (скопа). Выдры, как правило, входят в пруды и выходят из них в одном и том же месте, образуя изношенную горку, и они, как правило, питаются своим уловом в одних и тех же местах на берегу. Выдры довольно неаккуратны в еде и после еды оставляют объедки и кости.У них также есть отличительные фекалии. Выдры не представляют серьезной угрозы для популяций рыб, за исключением тех случаев, когда пруды были зарыблены триплоидным белым амуром. Выдры могут предпочтительно удалять триплоидного белого амура из прудов с ливневыми стоками. Выдры являются охраняемым видом пушных зверей, поэтому перед тем, как отловить их в ловушку или поговорить с оператором службы охраны дикой природы, ознакомьтесь с государственными правилами. (См. раздел о бобрах, ондатрах и выдрах)

Место ловли леща в долине Стардью: где ловить леща быть довольно надоедливым, если вы не возьмете свое рыболовное снаряжение и не пойдете ловить рыбу в определенное время.Итак, здесь, в Game Revolution, мы собираемся рассказать вам

не только о том, где найти локации Леща в Stardew Valley , но и о его ценности, а также о том, кому в Долине он нравится, не нравится или откровенно ненавидит.

Где ловить леща в

Stardew Valley

Теперь, в зависимости от того, какая у вас стартап-ферма, у вас есть возможность найти леща у самой двери в период с 18:00 до 2:00. Однако для тех, кто инвестировал в другие стартовые фермы, это может быть немного сложно.

Поскольку рыба-лещ водится в реках, другие места, где вы можете их найти, находятся рядом с музеем в центре города, мост прямо перед тем, как вы спуститесь к пляжу, и небольшая река рядом с шахтами. Помните, что ловить леща в реке можно только в 18:00 и 2:00, так что подготовьтесь перед рыбалкой так, как будто от этого зависит ваша жизнь. Вы определенно не хотите тратить свое время на это, когда у вас есть только ограниченное количество часов в дне Stardew Valley .

Какова ценность Леща в

Stardew Valley ?

Давайте не будем ходить вокруг да около. Вы фермер, и у вас есть серьезные деньги, чтобы заработать. Тем не менее, стоимость вашего Леща может варьироваться в зависимости от качества рыбы, а также от ваших рыболовных привилегий. Например, простой лещ будет стоить 45 граммов, тогда как лещ золотого качества будет оценен в 67 граммов.

Если у вас есть рыболовные привилегии Fisher или Angler, эти ставки увеличатся на 25% и 50%, что приведет к серьезным деньгам.

Какой персонаж любит Леща в

Stardew Valley ?

Хотите верьте, хотите нет, но мало кто любит получать рыбу, которую вы только что выловили из реки своего сада. Тем не менее, есть некоторые персонажи, которые тоже не совсем против этого, а некоторые просто не заботятся, потому что подарок есть подарок.

нейтральная реакция:

нейтральная реакция:

• Demetrius
• ELLIOTT
• LINUS
• PAM
• Sebastian
• Willy
• Willy
• Willy

Ненависть реакция:

Все остальные прямые ненавидки лещают, так что, возможно, если вы планируете вручить прекрасную абигал ? Мы предполагаем, что давать ей рыбу — неправильный образ действий.

Границы | Изменение микробиоты кишечника у дорады, получавшей микробные и переработанные животные белки в качестве основного источника пищевого белка

Введение

За последние два десятилетия отрасль аквакультуры растет быстрее (∼7% годового роста), чем любой другой сектор животноводства, при этом коэффициенты конверсии корма (FCR, потребление сухого корма/привес) (1,1–1,6) ниже, чем в птицеводстве. (1,4–1,8), свинины (2,6–4,4) и крупного рогатого скота (3,5–9) (Clark and Tilman, 2017; Ritchie and Roser, 2019).Тем не менее, корма являются основной статьей расходов при выращивании рыбы на фермах, и зависимость морской аквакультуры от ингредиентов морских кормов по-прежнему остается высокой (Tacon and Metian, 2015; Ytrestøyl et al., 2015). Исторически рыбная мука (РМ) использовалась в качестве основного источника белка в большинстве кормов для выращиваемых рыб из-за ее высокого содержания белка и отличного баланса аминокислот, но она также является хорошим источником витаминов, незаменимых жирных кислот, кальция, фосфора и других полезных ископаемых, что затрудняет высокие уровни замены альтернативным сырьем (Naylor et al., 2009; Олсен и Хасан, 2012 г.; Олива-Телес и др., 2015). Традиционно растительные диеты считались наиболее подходящей альтернативой, и высокие уровни комбинированной замены FM и рыбьего жира (FO) могут быть достигнуты у атлантического лосося ( Salmo salar ) и у типично морской рыбы, такой как европейский морской окунь. ( Dicentrarchus labrax ) и дорада ( Sparus aurata ) (Espe et al., 2006; Torrecillas et al., 2017; Simó-Mirabet et al., 2018; Aas et al., 2019; Perera et al. ., 2019). Тем не менее, эти замещающие диеты должны быть адекватно дополнены фосфором, лизином, аминокислотами серы, белковыми гидролизатами или нутрицевтиками, чтобы удовлетворить потребности в питательных веществах для роста (Simó-Mirabet et al., 2018; Egerton et al., 2020), а также предупреждение провоспалительных процессов и нарушения проницаемости кишечного барьера (Estensoro et al., 2016; Piazzon et al., 2017). Тем не менее, даже при уменьшении уровня включения FM к 2050 году может возникнуть нехватка от 0,4 до 1,32 миллиона метрических тонн FM, что значительно замедлит рост индустрии аквакультуры (Jones et al., 2020). Таким образом, существует острая потребность в подходящих белковых ингредиентах для поддержания продуктивности выращиваемой рыбы и стабилизации поставок кормовых ингредиентов во время расширения аквакультуры.

Белки насекомых, обработанные животные белки (PAP) и белки одиночных клеток (SCP) могут сыграть важную роль в разработке кормов для рыб в будущем (Nogales-Mérida et al., 2018; Révész and Biró, 2019). ; Turchini et al., 2019; Glencross et al., 2020). Конечно, у европейского морского окуня можно заменить до 80% муки FM обезжиренной мукой личинок Tenebrio molitor без вредного воздействия на усвояемость питательных веществ, показатели роста и маркеры липидного/энергетического метаболизма (Basto et al., 2021). ППА из различных побочных продуктов животного происхождения (перьевая мука, кровяная мука, мясо и костная мука нежвачных животных) также представляют собой прекрасную альтернативу ФМ после повторного одобрения Европейским союзом использования ППА в кормах для аквакультуры (Регламент ЕС). № 56/2013). Действительно, превосходные вкусовые качества, конкурентоспособная цена и высокое содержание белка при меньшем количестве углеводов, чем в растительных белках, делают местные сельскохозяйственные побочные продукты хорошими кандидатами на более устойчивые корма для аквакультур. Тем не менее, ряд недавних исследований дорады показал, что максимальный уровень замены тесно связан с составом рациона и качеством переработанных PAP (Moutinho et al., 2017; Дэвис и др., 2019 г.; Карапанагиотидис и др., 2019; Псофакис и др., 2020; Фонтинья и др., 2021). Точно так же продукты SCP, приготовленные из различных микробных источников, включая микроводоросли, дрожжи и бактерии, будут способствовать успеху рационов с низким содержанием FM в морской аквакультуре (Jones et al., 2020). Это было подтверждено исследованиями, проведенными на карангидовых рыбах во Флориде ( Trachinotus carolinus ), где была достигнута полная замена FM (12,82% бактериального SCP) без признаков нарушения роста (Rhodes et al., 2015). Недавно высокая частичная замена FM фототрофными бактериями также была успешно доказана у азиатского морского окуня ( Lates calcarifer ) (Delamare-Deboutteville et al., 2019). У дорады замена FM грибами или микроводорослями SCP также была испытана (Vizcaíno et al. , 2014; Rimoldi et al., 2020; Zamani et al., 2020), но использование бактериальных SCP в качестве основного пищевого белка источник у этого вида оценивается меньше. В любом случае долгосрочная пригодность высоких уровней включения альтернативных источников белка часто ставится под сомнение в аквакормах, потому что потенциальное использование новых ингредиентов корма требует использования традиционных методологий, а также передовых инструментов для выявления взаимосвязей между рационами. , метаболизм хозяина и кишечная микробиота, которые эволюционировали вместе с хозяином, чтобы развить мутуалистические отношения (Zhang and Davies, 2016; Agus et al., 2018). Таким образом, у рыб и дорад, в частности, на эту живую экосистему влияют не только внутренние факторы, такие как пол, возраст, генетика или стадия развития, но и внешние факторы, такие как диета, трофический уровень, время года или состояние в неволе (Estruch et al., 2015; Piazzon et al., 2017, 2019, 2020; Egerton et al., 2018; Rimoldi et al. , 2020).

Принимая во внимание этот сложный компромисс, целью настоящего исследования было оценить влияние частичной и полной замены ФМ на коммерческий продукт (LSAqua SusPro; LSAqua, Lambers-Seghers, Dendermonde, Бельгия), полученный комбинацией PAP и бактериального SCP.Пригодность этого белкового концентрата была успешно оценена на креветках ( Litopenaeus vannamei ) (Van Nguyen et al., 2020), и здесь мы стремились протестировать улучшенный состав, чтобы продвинуться дальше в безрыбных аквакормах для морской рыбы с высокой экономической ценностью. значение для европейской аквакультуры. В этом отношении дорада является основной культивируемой рыбой в Средиземноморском бассейне и третьим по важности продуцируемым видом в Европе. В текущем исследовании внимание было сосредоточено на показателях роста и показателях здоровья кишечника, включая гистопатологическую оценку отделов передней и задней кишки (PI), измерения концентрации молочной кислоты и короткоцепочечных жирных кислот (SCFA) в очищенных фекалиях и углубленный анализ аутохтонной микробиоты из передней кишки (AI).

Материалы и методы

Заявление об этике

Манипуляции с рыбой и сбор тканей проводились в соответствии с испанским (Королевский указ RD53/2013) и действующим законодательством ЕС (2010/63/ЕС) по обращению с экспериментальной рыбой. Все процедуры были одобрены комитетами по этике и благополучию животных Института аквакультуры Торре-де-ла-Саль (IATS-CSIC, Кастельон, Испания), CSIC (номер разрешения 112/2020) и Generalitat Valenciana (номер разрешения 2020/VSC/PEA). /0064).

Животные

Молодь дорады (март 2020 г.) была приобретена в средиземноморском питомнике (Piscimar, Бурриана, Испания) и адаптирована в течение 2 месяцев в закрытых экспериментальных помещениях IATS-CSIC при естественном фотопериоде и температурных условиях (40°5′ с.ш. ; 0°10′ в.д.). Морская вода откачивалась на берег (открытая система), ежедневно контролировались параметры воды. Содержание кислорода в сточных водах измеряли с помощью полярографического электрода Oxyguard (OxyGuard, Фарум, Дания), и оно всегда было выше 85% насыщения. Содержание неионизированного аммиака оставалось ниже 0,02 мг/л, как определено с помощью измерителя растворенного аммиака Q46N (Analytical Technology, Inc., Делф, Великобритания). В период акклиматизации и опыта (май–июль) температура воды повысилась с 18°С в мае до 25°С в июле.

Диеты

Три экструдированных изопротеиновых и изолипипидных диеты были разработаны LSAqua и произведены Research Diet Services BV (RDS, Wijk bij Duurstede, Нидерланды) в соответствии с современными отраслевыми практиками (таблица 1 и дополнительная таблица 1).Уровень включения ФМ в контрольный (CTRL) рацион составил 15%. В двух других экспериментальных диетах FM был частично (50%, 50 LSAqua) или полностью заменен (100%, 100 LSAqua) на LS-Aqua SusPro, смесь PAP (66%) и бактериальных SCP (33%). Обе диеты LS-Aqua были удобно дополнены L-лизином, DL-метионином и бикарбонатом фосфата кальция, чтобы достичь тех же концентраций, что и в контрольной диете, и удовлетворить потребности в питательных веществах.

Таблица 1. Ингредиенты и химический состав экспериментальных рационов.

Пробное кормление

В мае 2020 года рыбу весом 22–26 г случайным образом распределили по девяти 500-литровым аквариумам, чтобы создать тройные группы по 40 рыб в каждой. Все рыбы были помечены в спинной скелетной мышце с помощью пассивных интегрированных транспондеров (PIT) (ID-100A 1.25 Nano Transponder, Trovan, Мадрид, Испания) и индивидуально взвешены и измерены в начальной, промежуточной и конечной точках отбора проб (каждые 4 недели). с использованием FR-200 Fish Reader W (Trovan) для сбора и предварительной обработки данных.Испытание длилось 8 недель, и рыб кормили вручную один раз в день (12:00), шесть дней в неделю, почти до визуального насыщения с помощью CTRL или экспериментальных кормов на протяжении всего испытания. Потребление корма регистрировали ежедневно, а нормальное поведение рыб регулярно оценивали с помощью камеры наблюдения. Летальных исходов за весь период эксперимента не зарегистрировано.

Коллекция образцов

В конце эксперимента с кормлением и после двух дней голодания 9 рыб на рацион (3 рыбы на аквариум) были анестезированы 0.1 г/л трикаин-метасульфоната (MS-222, Sigma-Aldrich) и умерщвляли путем шейного разреза. Печень, кишечник (за исключением пилорического придатка) и брыжеечный жир взвешивали и измеряли длину (кишечника) для расчета гепатосоматического индекса (HSI), индекса брыжеечного жира (MSI), а также индексов массы кишечника (IWI) и длины (ILI). Участки ткани (∼0,4 см) печени, AI (сразу после пилорического слепого отростка) и PI (непосредственно перед анальной ампулой) фиксировали в 10% нейтральном забуференном формалине для последующего гистологического анализа.Оставшийся ИА открывали и осторожно промывали стерильным сбалансированным солевым раствором Хенкса для удаления неприлипших бактерий. Слизь из кишечника соскабливали тупым краем стерильного скальпеля и собирали в стерильные пробирки объемом 1,5 мл. Образцы слизи хранили на льду, а экстракцию ДНК проводили сразу же после отбора образцов точно так, как описано ранее (Piazzon et al. , 2020). Передняя часть кишечника была выбрана из-за ее важности для всасывания и метаболизма рыбой питательных веществ. Эта процедура нацелена на аутохтонные бактерии, поскольку эти популяции способны колонизировать поверхность слизистой оболочки, оказывая непосредственное влияние на физиологию рыб.Аллохтонные бактерии (нерезидентные) не могут колонизировать эти местообитания в нормальных условиях и оказывают более кратковременное воздействие на хозяина (Hao and Lee, 2004). Дополнительную рыбу (10 рыб на рацион) отбирали через 8 часов после кормления для анализа кишечной молочной кислоты и SCFA. Вкратце, рыбу анестезировали и умерщвляли путем шейного разреза, вырезали кишечник и собирали кишечное содержимое путем зачистки. В течение двух дней отбора проб, соответствующих сбору образцов натощак и после приема пищи, все образцы были получены в течение короткого периода продолжительностью 2–3 часа, чередуя повторы каждой диетической группы, чтобы избежать систематических ошибок из-за времени отбора образцов.

Гистологический анализ

Фиксированные в формалине кусочки печени, AI и PI заливали в парафин, делали срезы размером 4 мкм и окрашивали по Гимзе и периодической кислоте-Шиффу (PAS) в соответствии со стандартными процедурами. Срезы тканей анализировали под световым микроскопом Leitz Dialux 22, подключенным к камере Olympus DP70, и делали репрезентативные микрофотографии. Наблюдаемые гистологические изменения оценивали по полуколичественным шкалам для оценки интенсивности воспалительной реакции, поражений кишечного эпителия и изменений секреции слизи.Маркеры воспаления кишечника включали степень гиперплазии в собственной подслизистой пластинке пластинки, оцениваемую от 0 (отсутствие) до 3 (тяжелая степень), а также количество эозинофильных зернистых клеток (EGC) и интраэпителиальных лимфоцитов (IEL), которые оценивались в диапазоне от 0 (отсутствие) до 3 (очень много, что означает 25–30 клеток/поле микроскопа при 500-кратном увеличении). Эпителиальные поражения кишечника включали степень эпителиального некроза и десквамации, а также степень вакуолизации липидов в энтероцитах, которые оценивались от 0 (отсутствие) до 3 (тяжелая степень). Обилие дифференцированно окрашенных бокаловидных клеток (окрашенных в светлый или темный цвет по Гимзе) использовали для оценки изменений секреции слизи, вызванных питанием, и оценивали, как описано ранее для других клеточных маркеров. В срезах печени степень накопления липидов и гликогена в гепатоцитах оценивали от 0 (отсутствие) до 3 (повсеместное) окрашиванием по Гимзе или PAS соответственно. Кроме того, в печени количественно определяли обилие меланомакрофагальных центров и агрегатов лимфоцитов.

Определение молочной кислоты и SCFAs

Содержимое кишечника (200 мг) гомогенизировали с 0.1% раствор пептона с 0,85% NaCl (500 мкл) и центрифугировали при 10000× г в течение 5 мин при 4°С. Супернатант фильтровали и вводили 0,2 мкл в систему ВЭЖХ (Jasco, Токио, Япония), оснащенную детектором UV-975. КЦЖК разделяли с использованием колонки Rezex ROA Organic Acids (Phenomenex, Macclesfield, Соединенное Королевство) по методу, описанному Sanz et al. (2005). Подвижная фаза представляла собой линейный градиент 0,005 М серной кислоты в воде для ВЭЖХ, скорость потока составляла 0,6 мл/мин. Профиль элюирования контролировали при 210 нм, и идентификацию пиков проводили путем сравнения времени удерживания целевых пиков с временем удерживания стандартов. Градуировочные кривые муравьиной, уксусной, пропионовой, масляной и молочной кислот строили в диапазоне концентраций 1–100 мМ.

Illumina MiSseq для секвенирования и биоинформатического анализа

Область V3–V4 гена 16S рРНК (референтный интервал нуклеотидов 341–805 н.) была секвенирована с использованием системы Illumina MiSeq (2 × 300 парных концов) в отделе геномики Мадридского научного парка (FPCM).Подробности о ПЦР и секвенировании ампликонов были описаны ранее (Piazzon et al., 2019). Необработанные данные последовательности из этого эксперимента были загружены в архив считывания последовательностей (SRA) под регистрационным номером Bioproject PRJNA713764 (номер доступа BioSample: SAMN18260336-62). Необработанные прямые и обратные чтения были отфильтрованы по качеству с использованием FastQC и предварительно обработаны с использованием Prinseq (Schmieder and Edwards, 2011). Терминальные N-основания обрезали с обоих концов, а последовательности с > 5% от общего N-основания отбрасывали.Прочтения длиной <150 п.н., с показателем качества Phred <28 на обоих концах последовательности и со средним показателем качества Phred <26 были исключены. Затем прямое и обратное чтение были объединены с помощью fastq-join (Aronesty, 2013).

Назначение таксономии бактерий было выполнено с использованием Ribosomal Database Project (RDP) версии 11 в качестве справочной базы данных (Cole et al., 2014). Чтения были согласованы с заказным конвейером с использованием VSEARCH и BLAST (Altschul et al., 1990; Rognes et al., 2016). Было выполнено выравнивание с установлением фильтров высокой строгости (идентичность последовательности ≥90%, покрытие запроса ≥90%). Результаты таксономического распределения были отфильтрованы, а данные сведены в таблицу операционных таксономических единиц (OTU). Глубина выборки была нормализована путем масштабирования общей суммы, а затем пропорциональна общей глубине секвенирования в соответствии с ранее описанными рекомендациями (McKnight et al. , 2019).

Предполагаемый метагеном и анализ путей

Пифиллин использовали для нормализации данных ампликонов по количеству копий гена 16S рРНК и для определения метагеномного содержания (Iwai et al., 2016). Piphillin предсказывает инвентарь генов анализируемых OTU и оценивает потенциальную экспрессию на основе значений подсчета OTU, но не оценивает активность гена. Кроме того, некоторые прогнозы выполняются на уровне рода, без учета изменчивости между видами. Таким образом, этот анализ содержит хорошую степень неопределенности, но он полезен для оценки потенциальной транскриптомной способности подмножества бактерий. Анализ был выполнен с использованием OTU, значительно определяющих разделение по рационам в анализе PLS-DA (описано в разделе «Статистика»).Было реализовано отсечение идентичности последовательности на уровне 97%, а предполагаемые метагеномные функции были назначены с использованием базы данных Киотской энциклопедии генов и геномов (KEGG, выпуск от октября 2018 г. ). Необработанные выходные данные пути KEGG от Piphillin были проанализированы с помощью пакета R Bioconductor DESeq2 с использованием параметров по умолчанию после дробного подсчета до ближайшего целого числа (Love et al., 2014; Bledsoe et al., 2016; Piazzon et al., 2020).

Статистика

Данные роста были проанализированы однофакторным дисперсионным анализом с использованием SigmaPlot v14 (Systat Software Inc., Сан-Хосе, Калифорния, США). Нормальность данных была подтверждена критерием Шапиро-Уилка, а пост-критерий Данна использовался для множественных сравнений между группами. Анализ полуколичественных и количественных гистологических данных проводили с помощью непараметрического критерия Крускала-Уоллиса с последующим посттестом Данна для множественных сравнений. Результаты SCFA анализировали с помощью однофакторного дисперсионного анализа с последующим апостериорным тестом Холма-Сидака. Кривые разрежения (построение количества наблюдаемых таксономических отнесений к количеству последовательностей), оценки видового богатства и индексы альфа-разнообразия были получены с использованием пакета R phyloseq (McMurdie and Holmes, 2013). Для определения охвата микробных сообществ рассчитывали соотношение наблюдаемых и ожидаемых OTU (определяемых индексом Chao1). Различия в видовом богатстве, индексах разнообразия и обилии типов определяли по критерию Крускала-Уоллиса с использованием посттеста Данна с порогом значимости P < 0,05. Бета-разнообразие в группах было протестировано с помощью пермутационного многомерного дисперсионного анализа (PERMANOVA) с использованием непараметрического метода адониса из пакета R Vegan с 10 000 случайных перестановок.Для изучения разделения между группами были последовательно применены контролируемый частичный дискриминантный анализ методом наименьших квадратов (PLS-DA) и иерархическая кластеризация выборок с использованием EZinfo v3.0 (Umetrics, Umeå, Швеция) и R-пакета ggplot2 соответственно. В анализ были включены значения нормализованного количества OTU, присутствующих в 5 или более образцах. Вклад различных генов в разделение групп определялся минимальным значением переменной важности в проекции (VIP), достигающим полной кластеризации условий со значением VIP, равным 1. Статистика Хотеллинга T ² была рассчитана с помощью многомерного программного пакета EZinfo v3.0, и точки выше 95% доверительного интервала для T ² были исключены. Качество модели PLS-DA оценивали по параметрам R2Y (cum) и Q2 (cum), которые указывают на пригодность и предсказательную способность соответственно. Чтобы оценить, была ли контролируемая модель переобучена, был проведен проверочный тест, состоящий из 500 случайных перестановок, с использованием SIMCA-P+ (v11.0, Уметрика). Предполагаемые пути метагеномики считались дифференциально представленными с использованием порога значимости с поправкой на FDR, равного 0,05.

Результаты

Производительность роста

Данные о показателях роста представлены в Таблице 2. Все рыбы росли эффективно во время испытания, достигнув общего FCR 1,09–1,19. Тем не менее, суточная удельная скорость роста (SGR) значительно варьировалась от 2,31 у рыб CTRL до 2,19 у рыб 100LSAqua, при этом промежуточные значения (2,27) очень близки к значениям CTRL у рыб, получавших рацион 50LSAqua. В результате этого конечная масса тела и коэффициент физического состояния были значительно ниже ( P < 0,001) у рыб, получавших 100LSAqua, по сравнению с группами CTRL и 50LSAqua. Что касается органосоматических показателей, не было обнаружено статистически значимых различий в HSI, MSI и IWI, но в целом кишечник рыб LSAqua был укорочен, а самый низкий ГПЗ наблюдался в группе 50LSAqua.

Таблица 2. Влияние диетического лечения на показатели роста молоди дорады, выкармливаемой до визуального насыщения с мая по июль (8 недель) с использованием рационов CTRL, 50LSAqua и 100LSAqua.

Гистологическая оценка

Обе заместительные диеты оказывали преобладающее провоспалительное действие на гистологическом уровне в двух исследованных отделах кишечника (рис. 1, 2). У этих рыб в кишечнике наблюдалась воспалительная гиперплазия с интенсивным рекрутированием ЭГК и лимфоцитов как в сегментах AI, так и в сегментах PI, и, таким образом, средний балл для всех воспалительных маркеров был ниже у рыб CTRL. Во время ИИ количество IEL было значительно выше только для диеты 100LSAqua, в то время как подслизистая гиперплазия была значительно тяжелее для диеты 50LSAqua и 100LSAqua.Различий в характере распределения бокаловидных клеток в ИИ обнаружено не было. В этом сегменте кишечника практически отсутствовали эпителиальные поражения (оценка <0,5) и липидная вакуолизация (0 баллов). При ПИ воспалительная реакция, вызванная диетическим вмешательством, была более острой. Группы 50LSAqua и 100LSAqua показали значительное увеличение содержания EGC, а также значительно более высокую гиперплазию подслизистой оболочки по сравнению с рыбой CTRL. Более того, у рыб, которых кормили экстремальной заместительной диетой 100LSAqua, оценка гиперплазии подслизистого слоя была значительно выше, чем у рыб, получавших 50LSAqua.В этом сегменте кишечника наблюдалась обширная липидная вакуолизация энтероцитов, на которую не влияла диета, и, хотя и незначительно, эпителиальные поражения в PI увеличивались со степенью замещения белка. Изобилие светлоокрашенных бокаловидных клеток (по Гимзе) в PI значительно увеличилось у рыб 100LSAqua, и этот тип клеток показал характер окрашивания PAS +, указывающий на нейтральные муцины. Воспалительный эффект был также отмечен на уровне печени, где наблюдалось значительное увеличение агрегатов лимфоцитов для диеты 50LSAqua, что сопровождалось увеличением жировых отложений в печени.Не было обнаружено различий, вызванных питанием, для накопления гликогена в печени, и изменения в центрах меланомакрофагов не были значительными.

Рисунок 1. Гистологические изменения в кишечнике и печени. Передний (AI) и задний (PI) кишечник контрольной рыбы показаны на панелях (A, B) соответственно. Панели (C–H,L) соответствуют PI рыбы, получавшей рацион 50LSAqua, (I-K) соответствуют AI рациона 100LSAqua, а (M–P) – печени, получавшей рацион 50LSAqua.Обратите внимание на воспалительную реакцию в обоих сегментах кишечника, состоящую из эозинофильных зернистых клеток (EGC) (черные стрелки), интраэпителиальных лимфоцитов (IEL) (белые стрелки) и подслизистой гиперплазии (звездочки). Эпителиальный некроз и десквамация (F-G) вместе с вакуолизацией липидов в энтероцитах (H) и более высоким содержанием PAS + бокаловидных клеток (L) были обнаружены в 100LSAqua-PI. Печень представлена ​​скоплениями лимфоцитов (черные стрелки) рядом с ацинусами поджелудочной железы (M) и кровеносными сосудами (N) , ранними центрами меланомакрофагов (белая стрелка) и большими депо липидов (O) и умеренным запасом гликогена (P ) .Все изображения представляют собой срезы, окрашенные по Гимзе, за исключением (L) и (P) , окрашенных PAS. Шкала баров = 20 мкм.

Рисунок 2. Подсчет гистологических изменений у рыб, которых кормили контрольными (CTRL), 50LSAqua и 100LSAqua диетами. Средняя полуколичественная оценка (+SEM) от 0 (отсутствие) до 3 (очень много) показана для содержания PAS + бокаловидных клеток (GC), эозинофильных зернистых клеток (EGC) и внутриэпителиальных лимфоцитов (IEL). Средняя полуколичественная оценка (+SEM) от 0 (отсутствие) до 3 (тяжелая) показана для степени гиперплазии в подслизистой оболочке (Hyp), вакуолизации энтероцитов (Vac), поражений эпителия (Les), накопления жира в печени (Fat). и хранение гликогена в печени (Gly).Общее количество центров меланомакрофагов (MMC) и агрегатов лимфоцитов (LA) определяли количественно в печени (среднее количество + SEM). Различные буквы внутри каждого изменения указывают на статистически значимые различия между диетами ( P <0,05).

Кишечная молочная кислота и SCFA

Никаких существенных различий между группами не было обнаружено для измеренных концентраций молочной, муравьиной, пропионовой и уксусной кислот, но все они показали тенденцию к снижению при высоком замещении FM, за исключением пропионовой кислоты.Таким образом, общая концентрация SCFA значительно снизилась при замене FM с 18,91 мкмоль/г у рыб CTRL до 14,05 мкмоль/г у рыб 50LSAqua и 11,3 мкмоль/г у рыб 100LSAqua (рис. 3).

Рисунок 3. Концентрация пропионовой кислоты в кишечнике и общее количество короткоцепочечных жирных кислот (ΣSCFA) в рационах рыб, получавших CTRL (красные столбцы), 50LSAqua (голубые столбцы) и 100LSAqua (темно-синие столбцы). Представлены средние значения + SEM ( n = 10 рыб на группу).Значимые различия (однофакторный дисперсионный анализ, апостериорный тест Холма-Сидака, P <0,05) обозначены разными буквами, которые соответствуют попарным сравнениям между диетическими группами.

Альфа-разнообразие и микробный состав

Секвенирование 27 образцов

Illumina дало 3 521 879 прочтений высокого качества, в среднем 130 439 прочтений на образец, в диапазоне от 81 080 до 198 602 (дополнительная таблица 2). Чтения были назначены 1567 OTU с порогом идентичности 97%. Почти половина этих OTU (48.3 %) были классифицированы до уровня вида, 87,2 % до уровня рода и более 95 % до уровня семейства (95,1 %), порядка (97,5 %), класса (98,8 %) и типа ( 99,9%). Анализ разрежения показал, что большинство кривых приближается к насыщению (горизонтальная асимптота) (дополнительный рисунок 1), но для обеспечения адекватности образцов был рассчитан охват с точки зрения богатства, достигнутого в нашем анализе. Этот анализ помог нам разгадать две выборки с меньшим количеством предсказанных OTU, чем ожидалось, что можно рассматривать как потенциальные выбросы.Остальные образцы показали хороший охват прокариотического сообщества со средним значением 67,3% (дополнительная таблица 2).

При сравнении бактериального разнообразия и состава рационов на основе CTRL и LSAqua (табл. 3) не было обнаружено существенных различий в индексах богатства Chao1 и ACE, но более высокий ( P < 0,05) индекс разнообразия Симпсона был обнаружен в группа 100LSAqua, а рыба 50LSAqua показывает промежуточные значения. На уровне типа (рис. 4) протеобактерии были наиболее распространенными бактериями, составляющими более 50% от общей микробиоты во всех группах, без существенных изменений. Параллельно было обнаружено значительное увеличение филума Actinobacteria как в группах 50LSAqua, так и в группах 100LSAqua (22,1–24,1%) по сравнению с рыбой CTRL (12,1%). Тип Firmicutes значительно уменьшился у рыб 100LSAqua (8,6%) по сравнению с группой CTRL (23,7%), с промежуточными значениями для рыб 50LSAqua (11,9%). Наконец, менее распространенный тип Bacteroidetes составил около 3–6% во всех группах.

Таблица 3. Оценщики видового богатства (Chao1 и ACE) и индексы разнообразия (Shannon и Simpson) 9 рыб групп CTRL, 50LSAqua и 100LSAqua.

Рисунок 4. Относительное обилие типов бактерий в передней части кишечника рыб, получавших рационы CTRL, 50LSAqua и 100LSAqua. Значительные различия (критерий Крускала-Уоллиса, пост-тест Данна, P <0,05) обозначены разными буквами, которые соответствуют попарным сравнениям внутри каждого типа среди диетических групп.

Дискриминантный анализ микробиоты

Пермутационный многомерный дисперсионный анализ был использован для оценки различий в бактериальном составе в зависимости от диетической группы, но статистических различий не было обнаружено при сравнении животных, получавших три разных рациона ( P = 0. 211, F = 1,1320, R ² = 0,0404). Тем не менее, статистические различия были обнаружены при сравнении рыб, которых кормили рационами на основе CTRL и LSAqua (50/100LSAqua) ( P = 0,032, F = 1,1820, R ² = 0,0531). Для проверки и более подробного изучения этих различий была построена и статистически проверена модель PLS-DA (R2Y = 98%, Q2 = 41%). При построении модели рыба из группы 100LSAqua и рыба из группы CTRL были идентифицированы как выбросы и исключены из модели.Эти выбросы совпали с образцами с низкими коэффициентами охвата, ранее рассчитанными в дополнительной таблице 2. Остальные точки были использованы для построения модели PLS-DA (рис. 5A), показывающей четкое разделение рыб, получавших рацион 50/100 LSAqua, вдоль компонента 1 (89,02). %) от рыб, которых кормили рационами CTRL. Модель PLS-DA была успешно проверена с помощью теста перестановки, исключающего возможность переобучения модели под наблюдением (дополнительный рисунок 2). Эти результаты подчеркивают, что диета оказывает значительное влияние на состав прикрепившихся бактериальных сообществ переднего отдела кишечника.Чтобы определить, какие группы бактерий вызвали эти разделения с изменениями диеты, был проведен более подробный анализ переменной важности в проекции (VIP) во всех группах PLS-DA на протяжении всего представления тепловой карты (рис. 5B). Была применена иерархическая группировка образцов, и были рассчитаны минимальные значения VIP, существенно определяющие разделение групп в модели. OTU в пределах этих значений были выбраны для дальнейшего анализа. Различия в диетических группах в основном заключались в изменении 112 OTU (VIP ≥ 1), с которыми можно ознакомиться в дополнительной таблице 3.

Рис. 5. (A) Двухмерный график оценок PLS-DA, построенный с использованием переменной диеты для всех групп, представляющий распределение образцов между первыми двумя компонентами в модели. Подтверждение с помощью теста перестановки можно найти на дополнительном рисунке 2. (B) Тепловая карта, представляющая распределение численности ( Z -оценка) OTU, которые, как было установлено, определяют разделение по диете среди всех групп.

На рис. 6 показаны наиболее распространенные бактерии (> 1% по крайней мере в одной группе; 46 OTU) из тех, которые исключительно способствовали разделению по диетическим группам, упорядоченные по соответствующему типу ответа, полученному путем кластеризации.Первый тип ответа включал 29 OTU, увеличившихся с введением LSAqua SusPro. Verrucomicrobia (род Luteolibacter ) и Chlamydiae (семейство Parachlamydiaceae) были обнаружены исключительно в этом первом типе ответа, а также несколько видов класса Betaproteobacteria. Некоторые виды семейств Rhodospirillales, Rhizobiales, Salinisphaerales, Xanthomonadales и Enterobacteriales были увеличены в рационе на основе LSAqua. Наконец, на уровне рода наличие Paracoccus , Tetrathinimicrobium , Tetrasphaericrobium , Rubellimicrobium , Diblasimicrobium , DiTzia , Propioniclava и ButyriviRio также были характерны для этого ответа. Второй тип ответа сгруппировал 17 OTU со значительно большей долей в группе CTRL. В этой группе появились Bacteroidetes семейства Flavobacteriaceae, а также некоторые ОТЕ из порядков Chromatiales, Bacillales и Methylococcales. Генерирующиеся исключительно изменяющиеся в этом типе реагирования, составили Aggrugatibacter , Closegibium Sensu Stricto , Acinetobacter , Rhodovulum , Novosphingobium , ALBIMONAS и PSYCHIMROBACTER .

Рисунок 6. Точечная карта , изображающая OTU с долей более 1% по крайней мере в одной диетической группе. Размер точек представляет собой нормализованное количество в каждой группе. Цветовая шкала представляет среднее содержание в процентах каждой OTU в каждой группе. CTRL и 50/100LSAqua относятся к контрольной и комбинированной диетам на основе LSAqua соответственно. OTU над пунктирной синей линией показали более высокую численность в группе 50/100LSAqua; OTU ниже синей пунктирной линии показали более высокую численность в группе CTRL.

Предполагаемый метагеном и анализ путей

В попытке оценить биологическую значимость различий, вызванных диетами в микробиоте разных групп семей, был проведен анализ путей с использованием предполагаемых метагеномов 112 OTU, определяющих разделение по диете (рис. 7). Результаты показали, что 27 путей могут значительно измениться, принимая во внимание генный инвентарь дискриминантных OTU, в сравнении между рыбами, которых кормили кормами 50/100LSAqua, и рыбами, которых кормили рационами CTRL.

Рисунок 7. Анализ пути из предсказанного метагенома. Значения представляют собой Log ₂ кратное изменение сравнения между группами 50/100 LSAqua и CTRL (FDR <0,05). Цифры в столбцах указывают количество обильных OTU (VIP> 1;> 1%), связанных с экспрессией генов, участвующих в каждом пути.

Пути, связанные с иммунным ответом (сигнальный путь IL-17, дифференцировка клеток Th27, процессинг и презентация антигена), гормональными процессами (сигнальный путь эстрогена и опосредованное прогестероном созревание ооцитов) и метаболизмом альфа-линолевой кислоты, были недостаточно представлены в исследованиях на основе LSAqua. диеты.Перепредставленные пути в группах LSAqua были связаны с сигнальным путем кальция, меланогенезом, биосинтезом кутина, суберина и парафина, биосинтезом флавоноидов, ощущением кворума и сигнальным путем Ras. Здесь также была обнаружена гормональная регуляция с чрезмерным представлением путей передачи сигналов гормонов щитовидной железы и сигналов ГнРГ. Было предсказано заметное присутствие до четырех путей, связанных с продукцией противомикробных препаратов (биосинтез стрептомицина, биосинтез ансамицинов, биосинтез пенициллина и цефалоспорина и биосинтез немойцина, канамицина и гентамицина).Предполагаемый анализ метагенома также показал в общей сложности 17 преобладающих (VIP ≥ 1; > 1% в изобилии) OTU, геномы которых могут быть связаны с экспрессией генов, участвующих в дифференциально представленных путях (FDR <0,05). Список бактерий, связанных с каждым путем, можно найти в дополнительной таблице 4. Следует отметить, что мы должны учитывать, что эта информация была получена из in silico и отражает только то, что потенциально может происходить, но все же имеет значение для оценить предполагаемую метаболическую способность бактериальных популяций.

Обсуждение

Интенсификация и устойчивость аквакультуры привели к возникновению новых проблем, поскольку необходимо адаптироваться не только к включению новых пищевых ингредиентов, но и решать проблемы, связанные с интенсивным производством рыбы. Использование дикой рыбы в качестве корма для аквакультуры становится неустойчивым, и разрабатываются новые стратегии замены альтернативными и устойчивыми ингредиентами для эффективного производства рационов с низким содержанием FM или без FM (Peixoto et al., 2019; Рамос-Пинто и др., 2019 г.; Рейс и др., 2021). Среди этих стратегий PAP и SCP являются многообещающими материалами для разработки будущих кормов для рыб. Однако влияние этих новых материалов на физиологию хозяина и связанную с ним микробиоту, а также то, как взаимодействуют эти две системы, остаются в значительной степени неизвестными. Настоящее исследование показало, что изменение микробиоты кишечника, возможно, является разрешительным, но также и необходимым процессом для долгосрочного сохранения показателей роста и гомеостаза кишечника в модели диеты морской рыбы, лишенной FM.

При ближайшем рассмотрении показатели роста рыб, которых кормили 50LSAqua, были почти неотличимы от группы CTRL. Тем не менее, небольшое, но статистически значимое снижение SGR (5%) было обнаружено при полной замене FM на LSAqua SusPro. Достижению статистически значимых различий способствовала низкая изменчивость между повторными аквариумами в ходе эксперимента с кормлением. Конечно, показатели роста во всех диетических группах в настоящем исследовании были в верхнем диапазоне для класса размера и условий выращивания дорады (Simó-Mirabet et al., 2018; Мартос-Ситча и др., 2019). Однако, согласно обзору Glencross et al. (2020), успех замены FM продуктами PAP и SCP сильно варьируется в аквакормах. Действительно, частичная или полная замена FM дрожжевыми (Zhao et al., 2017) или бактериальными белками (Hardy et al., 2018) вполне возможна у креветок. Точно так же до 40–50% могут быть заменены без ухудшения роста у тиляпии ( Oreochromis mossambicus ) и европейского морского окуня (Davies and Wareham, 1988; Oliva-Teles and Goncalves, 2001). Замена FM бактериальными белками, по-видимому, более ограничена у атлантического палтуса ( Hippoglossus hippoglossus ) (Aas et al., 2007). Точно так же частичная, но не полная замена была возможна у азиатского морского окуня (Delamare-Deboutteville et al., 2019). Следовательно, необходимо оценить оптимальный уровень замены FM для каждой SCP, вида рыб, стадии развития и условий выращивания. По-видимому, успех замены FM на PAP в целом менее ограничителен. На самом деле это распространяется на дораду, у которой полная или высокая степень замены FM (> 75%) возможна во время краткосрочных испытаний (Moutinho et al., 2017: Саббах и др., 2019; Фонтинья и др., 2021). В соответствии с этим, здесь было обнаружено лишь незначительное ухудшение характеристик роста при использовании смеси PAP птицы и бактериальных белков. Однако это будет ограничено провоспалительным состоянием, которое дозозависимо подтверждается гистопатологической оценкой AI и PI сегментов рыб, получавших корма LSAqua. Действительно, воспаление является распространенным признаком опосредованного питанием метаболического расстройства у молоди дорады, получающей практичные диеты с высоким уровнем замены FM/FO растительными ингредиентами (Ballester-Lozano et al. , 2015).

Жирные кислоты с короткой цепью являются конечными продуктами микробной ферментации белка и клетчатки, которые служат в качестве основного источника энергии для энтероцитов, а также для сохранения гомеостаза кишечника за счет сложного компромисса противовоспалительной активности (Donohoe et al., 2011; Corrêa). -Oliveira et al., 2016; Morrison and Preston, 2016; Abdel-Latif et al., 2020; Abdel-Tawwab et al., 2021). Их благотворное влияние было продемонстрировано на примере дорады, где пищевые добавки SCFA помогли обратить вспять провоспалительное состояние рыб, питавшихся растительной пищей (Robles et al., 2013; Бенедито-Палос и др., 2016 г.; Пьяццон и др., 2017). С другой стороны, теперь есть доказательства того, что диетический гептаноат, жирная кислота со средней длиной цепи, способствовал повышению эффективности кормления и плавательных характеристик дорады (Martos-Sitcha et al., 2018). В текущем исследовании кишечное содержание общих SCFAs уменьшалось дозозависимым образом при замещении FM, поскольку эта особенность связана с изменениями роста и провоспалительного статуса. У тех же видов пищевые добавки с белковыми экстрактами микроводорослей Navicula вызывали воспалительные маркеры (Reyes-Becerril et al., 2013). Аналогичным образом, полная замена ЖМ мукой из побочных продуктов домашней птицы оказала явное воспалительное действие на печень у линя ( Tinca tinca ) (Panicz et al., 2017) и увеличила скорость отложения липидов с негативным влиянием на рост и иммунную систему. реакция большеротого окуня ( Micropterus salmoides ) (Subhadra et al., 2006). Принимая все это во внимание, можно предположить, что добавление в рацион 100LSAqua таких короткоцепочечных жирных кислот, как бутират или пропионат, может противодействовать некоторым наблюдаемым побочным эффектам у этих рыб, хотя для ответа на этот конкретный вопрос необходимы дальнейшие исследования, которые подробно обсуждаются ниже.

Микробиота кишечника регулирует процессы питания, пищеварения и обмена веществ и имеет решающее значение для развития и обучения иммунитета (Feng et al. , 2018; Butt and Volkoff, 2019), будучи диетическими факторами, одним из наиболее важных факторов микробного разнообразия кишечника (Moschen et al. др., 2012). Фактически, основная кишечная микробиота явно различается у плотоядных, всеядных и растительноядных видов рыб (Liu et al., 2016). В нашем исследовании увеличение индекса разнообразия Симпсона было обнаружено как в группах 50LSAqua, так и в группах 100LSAqua (табл. 3), что позволяет предположить, что кишечник рыб, получавших корма с заменой ФМ, содержал более широкий спектр бактерий, способных усиливать более разнообразное количество бактерий. функций хозяина, как сообщалось ранее у форели при использовании SCP из водорослей (Lyons et al., 2017). Несмотря на это, типичная микробиота морских рыб с высоким содержанием (> 90%) типов Proteobacteria, Firmicutes, Actinobacteria и Bacteroidetes была обнаружена здесь во всех диетических группах, что согласуется с предыдущими исследованиями дорады (Kormas et al., 2014). ; Estruch et al., 2015; Piazzon et al. , 2019). Тем не менее, диеты LSAqua оказали влияние на бета-разнообразие микробиоты, и изменения в бактериальных сообществах кишечника уже были обнаружены на уровне типов (рис. 4), что подтверждает тот факт, что пищевые питательные вещества сильно влияют на кишечную микробиоту.В связи с этим дискриминантный анализ (рис. 5) выявил достоверное изменение 46 доминирующих OTU (VIP ≥ 1; > 1% по численности) (рис. 6), что позволило обнаружить различия в микробных сообществах кишечника на всех таксономических уровнях. Эти изменения вместе с предсказаниями предполагаемого метагенома (рис. 7) позволяют предположить, что структура микробиома меняется, чтобы иметь дело с альтернативными составами корма для рыб, используемыми в настоящем исследовании. Это предположение также подтверждается недавним исследованием европейского морского окуня с использованием PAP и SCP в качестве заменителей FM (Pérez-Pascual et al., 2020). Точная природа основного источника изменчивости бактериальных OTU не может быть установлена ​​путем сравнения экспериментов, проведенных на разных видах. Однако вполне вероятно, что источник белка является важным фактором, регулирующим кишечные микробные сообщества.

Протеобактерии, как грамотрицательные факультативные анаэробные организмы, обычно доминируют в водных нишах благодаря своим очень гибким метаболическим свойствам (Ikeda-Ohtsubo et al., 2018), являясь одним из самых распространенных симбионтов у морских рыб (Tarnecki et al., 2017). В настоящем исследовании наиболее распространенной OTU, относящейся к этому типу, у LSAquafish был Paracoccus halophilus , присутствующий в <3% в группе CTRL и увеличивающийся до ~9,5% у рыб, которых кормили экспериментальными диетами. Недавно было описано, что добавление Paracoccus marcusii уменьшает воспаление кишечника путем подавления передачи сигналов TLR4, оказывая положительное влияние на показатели роста и функцию кишечника молоди белого амура ( Ctenopharyngodon idella ) (Xue et al., 2020). Однако протеобактерии, как грамотрицательные, обычно связаны с повышенным воспалением кишечника, и их увеличение очень часто связано с воспалительным состоянием в кишечнике человека (Mukhopadhya et al. , 2012; Satokari, 2015). Одним из основных факторов воспалительного действия грамотрицательных бактерий является липополисахарид, молекула эндотоксина, которая индуцирует высвобождение провоспалительного хемокина IL-8 на локальном уровне кишечника (Teghanemt et al., 2005; Hiippala et al., 2020). Липополисахариды различных грамотрицательных бактерий различаются структурно, а липополисахариды класса Proteobacteria Gammaproteobacteria представляют собой специфические модификации, которые, как было показано, усиливают воспалительные эффекты, по крайней мере, у млекопитающих (Teghanemt et al., 2005). Интересно, что в нашей экспериментальной модели класс Gammaproteobacteria был значительно снижен с примерно 21% у рыб CTRL до 8,5% у рыб 50/100LSAqua. Точнее говоря, уменьшение Gammaproteobacteria было в основном связано с сокращением примерно на 10% рода Psychrobacter .Некоторые виды этого рода описаны как активаторы транскрипционного фактора NF-kB, способные индуцировать транскрипцию нескольких генов провоспалительных цитокинов (Chow et al. , 1999; Korneev et al., 2014). Действительно, недавно было описано, что этот род филогенетически близок к патобионтам (Welter et al., 2021). Кроме того, Acinetobacter , присутствующий только у рыб CTRL в нашем исследовании, также является известным усилителем продукции активных форм кислорода (АФК), индуцирующим окислительный стресс на клеточном уровне (Schieber and Chandel, 2014; Ajiboye et al. ., 2018). Таким образом, обнаруженные изменения в этих OTU могут иметь потенциальную противовоспалительную роль, что необходимо подтвердить с помощью транскриптомного анализа хозяина.

Вторым и третьим наиболее многочисленными типами во всех группах были грамположительные бактерии Firmicutes и Actinobacteria, которые разделяли измененное равновесие между группами. Актинобактерии значительно увеличились в рационах на основе LSAqua одновременно с уменьшением Firmicutes. Этот дисбаланс не кажется бессмысленным, поскольку актинобактерии, и особенно актиномицеты, считаются источником фармацевтически важных вторичных метаболитов (Dholakiya et al. , 2017). Было обнаружено, что морские актиномицеты обладают in vitro антиоксидантным и противовоспалительным потенциалом (Lavanyalatha et al., 2014). Все преобладающие актинобактерии в нашем эксперименте были отнесены к отряду Actinomycetales, который составлял ~10% в группе CTRL и ~20% в диетах на основе LSAqua, что снова предполагает потенциальный сдвиг в сторону противовоспалительной кишечной микробиоты, что противоречит гистологически наблюдаемым воспалительный профиль. Можно предположить, что сдвиг в сторону противовоспалительной микробной структуры является управляемым хозяином изменением бактериальных популяций в попытке сбалансировать вызванное диетой воспаление, но необходимы дополнительные исследования, чтобы раскрыть реальный метаболический потенциал этих популяций и основе этого регламента.Наиболее многочисленным родом Actinobacteria в рационах на основе LSAqua был Propioniciclava (∼6%), ранее описанный как пропионат-продуцирующие бактерии (Sugawara et al., 2011; Zhang et al. , 2017). Эта особенность может способствовать поддержанию количества пропионовой кислоты в очищенных фекалиях рыб LSAqua относительно постоянным, несмотря на общее снижение концентрации общих SCFAs.

Другим интересным результатом предполагаемого метагенома было чрезмерное представление чувства кворума и нескольких путей, связанных с биосинтезом противомикробных препаратов.Все 17 многочисленных OTU, идентифицированных Phiphillin, были связаны с путем определения кворума, ключевым для эффективной передачи сигналов среди бактерий (Jiménez and Sperandio, 2019). Среди прочих процессов синтез противомикробных веществ можно контролировать с помощью чувства кворума (Duerkop et al., 2009). Понятно, что антибиотики влияют на состав бактериального сообщества, но большая часть кишечного микробиома рыб, по-видимому, способна сохраняться, несмотря на прием антибиотиков (Kokou et al., 2020). Производство противомикробных препаратов в сложных бактериальных сообществах, например, в кишечнике, играет ключевую роль в конкуренции или антагонизме у бактерий с перекрывающимися нишами, но также является сигнальным посредником между отдельными штаммами, помогая поддерживать баланс этих сообществ (García- Гутьеррес и др. , 2019). Опять же, эти результаты основаны на прогнозах потенциальных функций в наблюдаемых бактериальных популяциях, поэтому для выявления фактических функциональных метаболических различий между группами необходимо использовать метатранскриптомные или метаболомные подходы. В любом случае, текущие результаты, по-видимому, предполагают, что наблюдаемое ремоделирование микробиоты у рыб, которых кормили LSAqua, по крайней мере частично, напрямую управляется кишечными бактериями посредством производства противомикробных веществ.

Таким образом, с точки зрения показателей роста, частичная и полная замена FM на LSAqua SusPro вполне осуществима в краткосрочных испытаниях дорады.Обнаружены некоторые пагубные эффекты, связанные с изменениями маркеров здоровья кишечника, особенно при самом высоком уровне замещения, приводящем к диете без FM. Это общая сдерживающая черта кормов без рыбы, и добавки с про- или пребиотиками становятся ключевыми стратегиями, вызывающими адаптивный ответ кишечной микробиоты для производства здоровой выращенной рыбы с высокой способностью к эффективному росту на диетах с низким содержанием FM/FO. Это открывает перед физиологами и заводчиками рыбы новые исследовательские возможности для содействия более этичному и устойчивому выращиванию рыбы в соответствии с критериями экономики замкнутого цикла.

Заявление о доступности данных

Наборы данных, представленные в этом исследовании, можно найти в онлайн-репозиториях. Названия репозиториев и регистрационные номера можно найти ниже: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/, PRJNA713764; https://www.ncbi.nlm.nih.gov/, SAMN18260336-62.

Заявление об этике

Исследование на животных было рассмотрено и одобрено комитетами по этике и благополучию животных Института аквакультуры Торре-де-ла-Саль (IATS-CSIC, Кастельон, Испания), CSIC (номер разрешения 112/2020) и Generalitat Valenciana (номер разрешения 2020/VSC/PEA/0064).

Вклад авторов

PS-J, FN-C, MCP, IE, AS-B и JP-S: формальный анализ. PS-J, FN-C, MCP и JP-S: письменная оригинальная рукопись. PS-J, AS-B, DV и JP-S: концептуализация. Все авторы, участвовавшие в экспериментальном исследовании, написании рецензий и редактировании, прочитали и одобрили окончательный вариант рукописи.

Конфликт интересов

PS-J и DV использовались компанией Lambers-Seghers NV (Хугледе, Бельгия).

Остальные авторы заявляют, что исследование проводилось при отсутствии каких-либо коммерческих или финансовых отношений, которые могли бы быть истолкованы как потенциальный конфликт интересов.

Финансирование

Эта работа была поддержана Исследовательской инновационной программой ЕС h3020 в рамках программы TNA (проект AE170009) в исследовательской инфраструктуре IATS-CSIC в рамках проекта AQUAEXCEL ²⁰²⁰ (652831). Этот вывод отражает только точку зрения автора, и Европейский Союз не может нести ответственность за любое использование содержащейся здесь информации. Дополнительное финансирование было получено в рамках испанского проекта MICINN (Bream-AquaINTECH, RTI2018–094128-B-I00). MCP финансировалась стипендией Рамона-и-Кахала для постдокторских исследований [RYC2018-024049-I/AEI/10.13039/501100011033 при софинансировании Европейского социального фонда (ESF) и ACOND/2020 Generalitat Valenciana].

Благодарности

Мы благодарим P. Simó-Mirabet и E. Rosell-Moll за их помощь в обращении с рыбой и ее кормлении во время испытания, а также J. Monfort и L. Rodríguez из Службы гистологии IATS-CSIC за гистологическую обработку. Вклад Т. Рекены и М. Мигеля в анализ SCFAs также высоко оценивается. Мы подтверждаем поддержку платы за публикацию Инициативой поддержки публикаций открытого доступа CSIC через ее Подразделение информационных ресурсов для исследований (URICI).

Дополнительный материал

Дополнительный материал к этой статье можно найти в Интернете по адресу: https://www.frontiersin.org/articles/10.3389/fmars.2021.705041/full#supplementary-material

.

Дополнительный рисунок 1 | Кривые разрежения, полученные на основе данных секвенирования 27 образцов, включенных в это исследование.

Дополнительный рисунок 2 | Валидации (перестановочные тесты) модели PLS-DA, показанной в этом исследовании.

Дополнительная таблица 1 | Аминокислотный профиль экспериментальных рационов.

Дополнительная таблица 2 | Таблица, показывающая подробные данные секвенирования, полученные в этом исследовании.

Дополнительная таблица 3 | Список OTU с минимальными значениями VIP (VIP ≥ 1), ответственными за разделение образцов по диете в различных диетических группах.

Дополнительная таблица 4 | Список распространенных OTU (VIP ≥ 1; > 1%) с геномным потенциалом для экспрессии генов, участвующих в дифференциальных путях (FDR < 0,05).

Сноски

Каталожные номера

Аас, Т.С., Хатлен Б., Грисдейл-Хелланд Б., Терьесен Б.Ф., Пенн М., Бакке-МакКеллеп А.М. и соавт. (2007). Потребление корма, рост и использование питательных веществ у атлантического палтуса (Hippoglossus hippoglossus), получающих рацион, содержащий бактериальную белковую муку. Аква. Рез. 38, 351–360. doi: 10.1111/j.1365-2109.2007.01672.x

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Аас, Т. С., Итрестейл, Т., и Осгард, Т. (2019). Использование кормовых ресурсов при производстве атлантического лосося ( Salmo salar ) в Норвегии: обновление за 2016 год. Аквакульт. Реп. 15:100216. doi: 10.1016/j.aqrep.2019.100216

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Абдель-Латиф, Х.М.Р., Абдель-Тавваб, М., Давуд, М.А.О., Менанто-Ледубль, С., и Эль-Матбули, М. (2020). Преимущества диетической масляной кислоты, бутирата натрия и их защищенных форм в аквакормах: обзор. Обр. Рыба. науч. Аква. 28, 421–448. дои: 10.1080/23308249.2020.1758899

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Абдель-Тавваб, М., Шукри, М., Фарраг, Ф.А., Эль-Шафай, Н.М., Давуд, М.А.О., и Абдель-Латиф, Х.М.Р. (2021). Диетические наночастицы бутирата натрия усиливали рост, активность пищеварительных ферментов, гистоморфометрию кишечника и транскрипцию связанных с ростом генов у молодых особей нильской тиляпии . Аквакультура 536:736467. doi: 10.1016/j.aquaculture.2021.736467

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Агус, А., Планше, Дж., и Сокол, Х. (2018). Регуляция кишечной микробиотой метаболизма триптофана в норме и при патологии. Микроб-хозяин клетки 23, 716–724. doi: 10.1016/j.chom.2018.05.003

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Аджибой, Т. О., Скибе, Э., и Вильхарм, Г. (2018). Вклад регулятора поглощения железа мехом в чувствительность и окислительную реакцию Acinetobacter baumannii на антибиотики. Микроб. Патог. 119, 35–41. doi: 10.1016/j.micpath.2018.03.060

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Альтшул, С. Ф., Гиш, В., Миллер, В., Майерс, Э.В., и Липман, Д.Дж. (1990). Базовый инструмент локального поиска выравнивания. Дж. Мол. биол. 215, 403–410.

Академия Google

Аронести, Э. (2013). Сравнение служебных программ секвенирования. Открытая Биоинформа. Дж. 7, 1–8. дои: 10.2174/1875036201307010001

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Баллестер-Лозано, Г. Ф., Бенедито-Палос, Л., Эстенсоро, И., Сития-Бобадилья, А., Кошик, С., и Перес-Санчес, Дж. (2015).Комплексная биометрическая, биохимическая и гистопатологическая оценка дефицита питательных веществ у дорады, питающейся полуочищенными рационами. руб. Дж. Нутр. 114, 713–726. дои: 10.1017/s0007114515002354

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Basto, A., Calduch-Giner, J., Oliveira, B., Petit, L., Sá, T., Maia, M.R., et al. (2021). Использование обезжиренной муки личинок Tenebrio molitor в качестве основного источника белка подтверждается данными о росте, липидном обмене и качестве мяса европейского морского окуня ( Dicentrarchus labra x). Перед. Физиол. 12:659567.

Академия Google

Бенедито-Палос, Л., Баллестер-Лозано, Г.Ф., Симо, П., Каралазос, В., Ортис, А. , Калдук-Гинер, Дж., и др. (2016). Длительное влияние бутирата и рационов с низким содержанием FM/FO на показатели роста, гематологию/биохимию крови и маркеры, связанные с молекулярным ростом дорады ( Sparus aurata ). Аквакультура 454, 8–18. doi: 10.1016/j.aquaculture.2015.12.008

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Бледсо, Дж.В., Петерсон, Б.К., Суонсон, К.С., и Смолл, Б.К. (2016). Онтогенетическая характеристика кишечной микробиоты канального сома с помощью секвенирования гена 16S рРНК дает представление о временных сдвигах и влиянии микробов окружающей среды. PLoS One 11:e0166379. doi: 10.1371/journal.pone.0166379

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Батт, Р. Л., и Волков, Х. (2019). Микробиота кишечника и энергетический гомеостаз у рыб. Перед. Эндокринол. 10:9.

Академия Google

Chow, J.C., Young, D.W., Golenbock, D.T., Christ, W.J., и Gusovsky, F. (1999). Толл-подобный рецептор-4 опосредует липополисахарид-индуцированную передачу сигнала. Дж. Биол. хим. 274, 10689–10692. doi: 10.1074/jbc.274.16.10689

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Кларк, М., и Тилман, Д. (2017). Сравнительный анализ воздействия систем сельскохозяйственного производства на окружающую среду, эффективности сельскохозяйственных ресурсов и выбора продуктов питания. Окружающая среда. Рез. лат. 12:064016. дои: 10.1088/1748-9326/aa6cd5

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Коул, Дж. Р., Ван, К., Фиш, Дж. А., Чай, Б., МакГаррелл, Д. М., Сан, Ю., и другие. (2014). Проект базы данных рибосом: данные и инструменты для высокопроизводительного анализа рРНК. Рез. нуклеиновых кислот. 42, Д633–Д642.

Академия Google

Корреа-Оливейра, Р., Фачи, Дж. Л., Виейра, А., Сато, Ф. Т., и Виноло, М. А. Р. (2016). Регуляция функции иммунных клеток короткоцепочечными жирными кислотами. клин. Перевод Иммунол. 5:e73. doi: 10.1038/cti.2016.17

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Дэвис, С.Дж., и Уэрхэм, Х. (1988). Предварительная оценка промышленного белка одноклеточных в практических рационах для тиляпии ( Oreochromis mossambicus ). Аквакультура 73, 189–199. дои: 10.1016/0044-8486(88)-1

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Дэвис, С. Дж., Лапорт, Дж., Гувейя, А., Салим, Х.С., Вудгейт, С.М., Хассан, М.С., и соавт. (2019). Валидация обработанных животных белков (моно-PAPS) в экспериментальных рационах для молоди дорады ( Sparus aurata L.) в качестве основных заменителей рыбной муки в рамках европейской перспективы. Аква. Нутр. 25, 225–238. doi: 10.1111/anu.12846

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Delamare-Deboutteville, J., Batstone, D.J., Kawasaki, M., Stegman, S., Salini, M., Tabrett, S., et al. (2019). Смешанная культура пурпурных фототрофных бактерий является эффективной заменой рыбной муки в аквакультуре. Вода Res. Х 4:100031. doi: 10.1016/j.wroa.2019.100031

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Дхолакия Р. Н., Кумар Р., Мишра А., Моди К. Х. и Джа Б. (2017). Антибактериальная и антиоксидантная активность нового штамма Actinobacteria, выделенного из залива Кхамбхат, Гуджарат. Перед. микробиол. 8:2420.

Академия Google

Донохью, Д.R., Garge, N., Zhang, X., Sun, W., O’Connell, T.M., Bunger, M.K., et al. (2011). Микробиом и бутират регулируют энергетический обмен и аутофагию в толстой кишке млекопитающих. Клеточный метаб. 13, 517–526. doi: 10.1016/j.cmet.2011.02.018

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Дуеркоп, Б.А., Варга, Дж., Чандлер, Дж.Р., Петерсон, С.Б., Герман, Дж.П., Черчилль, М.Е.А., и другие. (2009). Чувствительный к кворуму контроль синтеза антибиотиков у Burkholderia thailandensis . J. Бактериол. 191, 3909–3918. doi: 10.1128/jb.00200-09

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Эгертон, С., Каллоти, С., Хули, Дж., Стэнтон, К., и Росс, Р. П. (2018). Микробиота кишечника морских рыб. Перед. микробиол. 9:873.

Академия Google

Эгертон, С., Ван, А., Мерфи, К., Коллинз, Ф., Ахерн, Г., Сугрю, И., и др. (2020). Замена рыбной муки растительным белком в рационе атлантического лосося (Salmo salar) путем добавления гидролизата рыбного белка. науч. Респ. 10:4194.

Академия Google

Эспе, М., Лемме, А., Петри, А., и Эль-Мовафи, А. (2006). Может ли атлантический лосось расти на диете, лишенной рыбной муки? Аквакультура 255, 255–262. doi: 10.1016/j.aquaculture.2005.12.030

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Эстенсоро, И., Баллестер-Лозано, Г., Бенедито-Палос, Л., Грэммес, Ф., Мартос-Ситча, Дж. А., Мидланд, Л. Т., и соавт. (2016). Диетический бутират помогает восстановить кишечный статус морского костистого скелета ( Sparus aurata ), питающегося экстремальной диетой с низким содержанием рыбной муки и рыбьего жира. PLoS One 11:e0166564. doi: 10.1371/journal.pone.0166564

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Эструх, Г., Кольядо, М. К., Пеньяранда, Д. С., Томас Видаль, А., Ховер Серда, М., Перес Мартинес, Г., и др. (2015). Влияние замены рыбной муки в рационе дорады ( Sparus aurata ) на микробиоту желудочно-кишечного тракта, определяемое пиросеквенированием гена 16S рРНК. PLoS One 10:e0136389. doi: 10.1371/journal.pone.0136389

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Фэн, К., Чен, В. Д., и Ван, Ю. Д. (2018). Микробиота кишечника: неотъемлемый модератор здоровья и болезней. Перед. микробиол. 9:151.

Академия Google

Fontinha, F., Magalhães, R., Moutinho, S., Santos, R., Campos, P., Serra, C.R., et al. (2021). Влияние диетической муки и масла птицы на рост, пищеварительную способность и микробиоту кишечника молоди дорады ( Sparus aurata ). Аквакультура 530:735879. doi: 10.1016/j.aquaculture.2020.735879

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Гарсия-Гутьеррес, Э., Майер, М.Дж., Коттер, П.Д., и Нарбад, А. (2019). Микробиота кишечника как источник новых противомикробных препаратов. Микробы кишечника 10, 1–21. дои: 10.1080/194

.2018.1455790

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Гленкросс, Б.Д., Хайбен, Д., и Шрама, Дж.В. (2020). Обзор применения одноклеточных ингредиентов в кормах для аквакультуры. Рыбы 5, 1–39.

Академия Google

Хао, В.Л. и Ли, Ю. К. (2004). Микрофлора желудочно-кишечного тракта: обзор. Методы Мол. биол. 268, 491–502. doi: 10.1385/1-59259-766-1:491

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Харди, Р. В., Патро, Б., Пуйол-Баксли, К., Маркс, С. Дж., и Файнберг, Л. (2018). Частичная замена соевого шрота одноклеточным белком Methylobacterium extorquens в кормах для радужной форели ( Oncorhynchus mykiss ). Аква. Рез. 49, 2218–2224. дои: 10.1111/акр.13678

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Hiippala, K., Kainulainen, V., Suutarinen, M., Heini, T., Bowers, J.R., Jasso-Selles, D., et al. (2020). Выделение противовоспалительных и укрепляющих эпителий Bacteroides и Parabacteroides spp. от здорового донора кала. Питательные вещества 12:935. дои: 10.3390/nu12040935

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Икеда-Оцубо В., Бругман С., Уорден С. Х., Ребел Дж. М. Дж., Фолкертс Г.и Питерс, CMJ (2018). Как определить «оптимальную микробиоту?»: сравнительный обзор структуры и функций микробиоты животных, рыб и растений в сельском хозяйстве. Перед. Нутр. 5:90.

Академия Google

Иваи, С., Вейнмайер, Т., Шмидт, Б.Л., Альбертсон, Д.Г., Полосо, Н.Дж., Даббаг, К., и соавт. (2016). Пифиллин: улучшенное предсказание метагеномного содержания путем прямого вывода из микробиомов человека. PLoS One 11:e0166104. дои: 10.1371/journal.pone.0166104

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Хименес, А. Г., и Сперандио, В. (2019). «Чувство кворума и кишечный микробиом», в Чувство кворума: молекулярный механизм и биотехнологическое применение , изд. Г. Томмонаро (Лондон, EN: Elsevier), 151–169. doi: 10.1016/b978-0-12-814905-8.00006-x

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Джонс С.В., Карпол А., Фридман С., Мару Б.Т. и Трейси Б.П. (2020). Последние достижения в области использования протеина одиночных клеток в качестве кормового ингредиента в аквакультуре. Курс. мнение Биотех. 61, 189–197. doi: 10.1016/j.copbio.2019.12.026

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Карапанайотидис, И. Т., Псофакис, П., Менте, Э., Маландракис, Э., и Голомазу, Э. (2019). Влияние замены рыбной муки мукой из побочных продуктов птицы на показатели роста, приблизительный состав, активность пищеварительных ферментов, гематологические параметры и экспрессию генов дорады ( Sparus aurata ). Аква. Нутр. 25, 3–14.doi: 10.1111/anu.12824

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Коко Ф., Сассон Г., Мизрахи И. и Кнаани А. (2020). Эффект антибиотика и устойчивость микробиома различаются в зависимости от кишечника европейского морского окуня. науч. Респ. 10:10003.

Академия Google

Кормас, К. А., Мезити, А., Менте, Э., и Френцос, А. (2014). Диетические различия отражаются на структуре прокариотического сообщества кишечника дикого и промышленно выращиваемого морского леща ( Sparus aurata ). Microbiologyopen 3, 718–728. doi: 10.1002/mbo3.202

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Корнеев К.В., Кондакова А.Н., Арбатский Н.П., Новотоцкая-Власова К.А., Ривкина Е.М., Анисимов А.П., и соавт. (2014). Различная биологическая активность липополисахаридов с различным статусом ацилирования липидов из мутантных штаммов Yersinia pestis и некоторых представителей рода Psychrobacter. Биохимический 79, 1333–1338. дои: 10.1134/s0006297914120062

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Лаваньялатха, Ю., Рашми, Х.К., и Махесавари Деви, П. (2014). Антиоксидантный и противовоспалительный потенциал морских актиномицетов in vitro. Междунар. Дж. Инж. Рез. 5:12.

Академия Google

Лю, Х., Го, X., Гунератне, Р., Лай, Р., Цзэн, К., Чжан, Ф., и др. (2016). На микробиом кишечника и активность ферментов деградации диких пресноводных рыб влияет их трофический уровень. науч. Респ. 6:24340.

Академия Google

Лав, М. И., Хубер, В.и Андерс, С. (2014). Модерированная оценка изменения кратности и дисперсии для данных секвенирования РНК с помощью DESeq2. Геном Биол. 15:550.

Академия Google

Лайонс, П. П., Тернбулл, Дж. Ф., Доусон, К. А., и Крамлиш, М. (2017). Влияние пищевых добавок с низким содержанием микроводорослей на микробиом дистального отдела кишечника выращиваемой радужной форели Oncorhynchus mykiss . Аква. Рез. 48, 2438–2452. doi: 10.1111/are.13080

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Мартос-Ситча, Й.А., Симо-Мирабет, П., де Лас Эрас, В., Калдук-Гинер, Дж. А, и Перес-Санчес, Дж. (2019). Тканеспецифическая оркестровка устойчивости дорады к гипоксии и высокой плотности посадки. Перед. Физиол. 10:840.

Академия Google

Мартос-Ситча, Дж. А., Симо-Мирабет, П., Пьяццон, М. К., де лас Эрас, В., Калдук-Гинер, Дж. А., Пуйалто, М., и др. (2018). Диетический гептаноат натрия помогает повысить эффективность кормления, уровень гормона роста и плавательные способности дорады ( Sparus aurata ). Аква. Нутр. 24, 1638–1651. doi: 10.1111/anu.12799

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Макнайт, Д. Т., Хуэрлиманн, Р., Бауэр, Д. С., Шварцкопф, Л., Алфорд, Р. А., и Зенгер, К. Р. (2019). Методы нормализации данных микробиома: экологическая перспектива. Методы Экол. Эвол. 10, 389–400. дои: 10.1111/2041-210x.13115

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Макмерди, П.Дж., и Холмс, С. (2013). phyloseq: пакет R для воспроизводимого интерактивного анализа и графики данных переписи микробиома. PLoS One 8:e61217. doi: 10.1371/journal.pone.0061217

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Моррисон, Д. Дж., и Престон, Т. (2016). Образование короткоцепочечных жирных кислот микробиотой кишечника и их влияние на метаболизм человека. Микробы кишечника 7, 189–200. дои: 10.1080/194

.2015.1134082

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Моутинью, С., Мартинес-Льоренс, С., Томас-Видаль, А., Ховер-Серда, М., Олива-Телес, А., и Перес, Х. (2017). Мясокостная мука как частичная замена рыбной муки в рационах молоди дорады ( Sparus aurata ): рост, эффективность кормления, использование аминокислот и экономическая эффективность. Аквакультура 468, 271–277. doi: 10.1016/j.aquaculture.2016.10.024

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Мухопадья И., Хансен Р., Эль-Омар Э. М. и Холд Г. Л. (2012). ВЗК – какую роль играют протеобактерии? Нац.Преподобный Гастроэнтерол. Гепатол. 9, 219–230. doi: 10.1038/nrgastro.2012.14

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Naylor, R.L., Hardy, R.W., Bureau, D.P., Chiu, A., Elliott, M., Farrell, A.P., et al. (2009). Кормление аквакультуры в эпоху ограниченных ресурсов. Проц. Натл. акад. науч. США 106:18040. doi: 10.1073/pnas.07106

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Ногалес-Мерида, Д., Гобби, П., Йозефиак, Д., Mazurkiewicz, J., Dudek, K., Rawski, M., et al. (2018). Мука из насекомых в питании рыб. Ред. Aquac. 11, 080–1103.

Академия Google

Олива-Телес, А., и Гонсалвеш, П. (2001). Частичная замена рыбной муки пивными дрожжами ( Saccaromyces cerevisae ) в рационах молоди морского окуня ( Dicentrarchus labrax ). Аквакультура 202, 269–278. doi: 10.1016/s0044-8486(01)00777-3

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Олива-Телес, А., Энес П. и Перес Х. (2015). «Замена рыбной муки и рыбьего жира в промышленных аквакормах для хищных рыб», в Feed and Feeding Practices in Aquaculture , ed. Д. Аллен Дэвис (Амстердам: Elsevier), 203–233. doi: 10.1016/b978-0-08-100506-4.00008-8

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Олсен Р.Л. и Хасан М.Х. (2012). Ограниченное предложение рыбной муки: влияние на будущее увеличение мирового производства аквакультуры. Trends Food Sci. Технол. 27, 120–128.doi: 10.1016/j.tifs.2012.06.003

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Панич, Р., Жоховска-Куявска, Дж., Садовский, Дж., и Собчак, М. (2017). Влияние кормления различными количествами муки из побочных продуктов домашней птицы на параметры крови, состав филе и структуру самок линей ( Tinca tinca ). Аква. Рез. 48, 5373–5384. doi: 10.1111/are.13351

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Пейшото, М. Дж., Ферраз, Р., Маньони, Л.J., Pereira, R., Goncalves, J.F., Calduch-Giner, J., et al. (2019). Защитное действие диеты, дополненной морскими водорослями, на антиоксидантные и иммунные реакции у европейского морского окуня ( Dicentrarchus labrax ), подвергшегося бактериальной инфекции. науч. Респ. 9:16134.

Академия Google

Перера, Э., Симо-Мирабет, П., СукШин, Х., Розелл-Молл, Э., Ная-Катала, Ф., Де лас Эрас, В., и другие. (2019). Отбор на рост связан у дорады ( Sparus aurata ) с гибкостью рациона, изменениями в характере роста и более высокой пластичностью кишечника. Аквакультура 507, 349–360. doi: 10.1016/j.aquaculture.2019.04.052

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Перес-Паскуаль, Д., Эстель, Дж., Дутто, Г., Родде, К., Бернарде, Ж.-Ф., Маршан, Ю., и др. (2020). Показатели роста и адаптируемость кишечной микробиоты европейского морского окуня ( Dicentrarchus labrax ) к альтернативным диетам, не содержащим рыбных продуктов. Микроорганизмы 8:1346. doi: 10.3390/микроорганизмы8091346

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Пьяццон, М.C., Calduch-Giner, J.A., Fouz, B., Estensoro, I., Simó-Mirabet, P., Puyalto, M., et al. (2017). Под контролем: как пищевая добавка может восстановить микробиом кишечника и протеомный профиль, а также повысить устойчивость к болезням у морских костистых рыб, питающихся растительной пищей. Микробиом 5:164.

Академия Google

Пьяццон, М. К., Ная-Катала, Ф., Перера, Э., Паленсуэла, О., Ситья-Бобадилья, А., и Перес-Санчес, Дж. (2020). Генетический отбор для роста определяет различия в составе кишечной микробиоты и устойчивости к паразитарным заболеваниям дорады. Микробиом 8:168.

Академия Google

Пьяццон, М. К., Найя-Катала, Ф., Симо-Мирабет, П., Пикард-Санчес, А., Ройг, Ф. Дж., Калдук-Гинер, Дж. А., и соавт. (2019). Пол, возраст и бактерии: как микробиота кишечника модулируется у протандрических рыб-гермафродитов. Перед. микробиол. 10:2512.

Академия Google

Псофакис П., Карапанагиотидис И. Т., Маландракис Э. Э., Голомазу Э., Эксадактилос А. и Менте Э. (2020).Влияние замены рыбной муки гидролизованной перьевой мукой на показатели роста, примерный состав, активность пищеварительных ферментов, гематологические параметры и связанную с ростом экспрессию генов дорады ( Sparus aurata ). Аквакультура 521:735006. doi: 10.1016/j.aquaculture.2020.735006

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Рамос-Пинто, Л., Мартос-Ситча, Дж. А., Рейс, Б., Азередо, Р., Фернандес-Бу, С., Перес-Санчес, Дж., и др. (2019).Добавка триптофана в пищу вызывает временное усиление иммунитета у молоди дорады ( Sparus aurata ), которых кормили рационом без рыбной муки. Иммунол рыбных моллюсков. 93, 240–250. doi: 10.1016/j.fsi.2019.07.033

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Рейс Б., Рамос-Пинто Л., Мартос-Ситча Дж. А., Мачадо М., Азередо Р., Фернандес-Бу С. и др. (2021). Состояние здоровья молоди дорады ( Sparus aurata ), получавшей рацион без рыбной муки и дополненный Phaeodactylum tricornutum. J. Appl. Фикол. 33, 979–996. doi: 10.1007/s10811-021-02377-4

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Ревес, Н., и Биро, Дж. (2019). Последние тенденции в кормовых ингредиентах для рыб – мини-обзор. Акта Аграр. Капошвариенсис 23, 32–47.

Академия Google

Рейес-Бесерриль, М., Гвардиола, Ф., Рохас, М., Асенсио-Валле, Ф., и Эстебан, М. А (2013). Диетическое введение микроводорослей Navicula sp. влияет на иммунный статус и экспрессию генов дорады ( Sparus aurata ). Иммунол рыбных моллюсков. 35, 883–889. doi: 10. 1016/j.fsi.2013.06.026

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Родс, Массачусетс, Чжоу Ю. и Дэвис, Д.А. (2015). Использование высушенной ферментированной биомассы в качестве замены рыбной муки в практических рационах Флорида помпано . Trachinotus carolinus . J. Appl. Аква. 27, 29–39. дои: 10.1080/10454438.2014.959834

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Римольди, С., Джини Э., Кох Дж. Ф. А., Яннини Ф., Брамбилла Ф. и Терова Г. (2020). Влияние гидролизата белка рыбы и автолизата дрожжей в качестве заменителей рыбной муки в рационе дорады ( Sparus aurata ) на микробиом кишечника рыб. BMC Вет. Рез. 16:118.

Академия Google

Роблес, Р., Лосано, А.Б., Севилья, А., Маркес, Л., Нуэс-Ортин, В., и Мояно, Ф.Дж. (2013). Влияние частично защищенного бутирата, используемого в качестве кормовой добавки, на рост и кишечный метаболизм морского леща ( Sparus aurata ). Рыбная физиол. Биохим. 39, 1567–1580. doi: 10.1007/s10695-013-9809-3

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Саббах, М., Скьявоне, Р., Брицци, Г., Сикуро, Б., Зилли, Л., и Вилелла, С. (2019). Мука из побочных продуктов домашней птицы как альтернатива рыбной муке в рационе молоди дорады ( Sparus aurata ). Аквакультура 511:734220. doi: 10.1016/j.aquaculture.2019.734220

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Санс, М.Л., Полемис Н., Моралес В., Корзо Н., Дракулараку А., Гибсон Г.Р. и соавт. (2005). Исследование in vitro потенциальной пребиотической активности олигосахаридов меда. Дж. Агрик. Пищевая хим. 53, 2914–2921. дои: 10.1021/jf0500684

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Сатокари, Р. (2015). Спорные отношения между хозяином и микробиотой при воспалительных заболеваниях кишечника: могут ли враги снова стать друзьями? Скан. Дж. Гастроэнтерол. 50, 34–42.дои: 10.3109/00365521.2014.966320

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Шибер, М., и Чандель, Н.С. (2014). АФК участвуют в передаче сигналов окислительно-восстановительного потенциала и окислительном стрессе. Курс. биол. 24, Р453–Р462.

Академия Google

Симо-Мирабет, П., Фелип, А., Эстенсоро, И., Мартос-Ситча, Дж. А., де лас Эрас, В., Калдук-Гинер, Дж., и др. (2018). Влияние диеты с низким содержанием рыбной муки и рыбьего жира на продуктивность, профиль половых стероидов и смену пола самца и самки дорады ( Sparus aurata ) в течение трехлетнего производственного цикла. Аквакультура 490, 64–74. doi: 10.1016/j.aquaculture.2018.02.025

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Субхадра, Б., Лохманн, Р., Роулз, С., и Чен, Р. (2006). Влияние замены рыбной муки мукой из побочных продуктов птицы на рост, состав тканей и гематологические параметры большеротого окуня ( Micropterus salmoides ), получавших рационы, содержащие различные липиды. Аквакультура 260, 221–231. doi: 10.1016/j.aquaculture.2006.06.029

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Сугавара Ю., Уэки А., Абэ К., Каку Н., Ватанабэ К. и Уэки К. (2011). Propioniciclava tarda gen. ноябрь, сп. nov., выделенный из метаногенного реактора, перерабатывающего отходы животноводческих ферм. Междунар. Дж. Сист. Эвол. микробиол. 61, 2298–2303. doi: 10.1099/ijs.0.027482-0

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Такон, А., и Метиан, М. (2015). Корма имеют значение: удовлетворение потребностей аквакультуры в кормах. Trends Food Sci. Технол. 23, 1–10. дои: 10.1080/23308249.2014.987209

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Тарнецкий, А. М., Бургос, Ф. А., Рэй, К. Л., и Ариас, К. Р. (2017). Микробиом кишечника рыб: разнообразие и симбиоз, раскрытые метагеномикой. J. Appl. микробиол. 123, 2–17. doi: 10.1111/jam.13415

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Теганемт А. , Чжан Д., Левис Э. Н., Вайс Дж. П. и Джоаннини Т. Л. (2005). Молекулярные основы пониженной активности недоацилированных эндотоксинов. Дж. Иммунол. 175, 4669–4676. doi: 10.4049/jиммунол.175.7.4669

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Torrecillas, S., Mompel, D., Caballero, M.J., Montero, D., Merrifield, D., Rodiles, A., et al. (2017). Влияние замены рыбной муки и рыбьего жира растительной мукой и маслами на здоровье кишечника европейского морского окуня ( Dicentrarchus labrax ). Аквакультура 468, 386–398. doi: 10.1016/j.aquaculture.2016.11.005

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Турчини, Г.М., Трушенски, Дж. Т., и Гленкросс, Б. Д. (2019). Мысли о будущем питания аквакультуры: переосмысление перспектив, чтобы отразить современные проблемы, связанные с разумным использованием морских ресурсов в аквакормах. Северная Америка Дж. Аквак. 81, 13–39. doi: 10.1002/naaq.10067

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Ван Нгуен, Н. , Ван Маллем, Д., Хоанг, Л., Ван Хан, Т., Тхань, Н., и Соле-Хименес, П. (2020). Замена рыбной муки белковым концентратом для белоногих креветок Litopenaeus vannamei . AQUAculture Asia Pacific 16, 30–32.

Академия Google

Вискайно, А. Дж., Лопес, Г., Саес, М. И., Хименес, Дж. А., Баррос, А., Идальго, Л., и др. (2014). Воздействие микроводоросли Scenedesmus almeriensis в качестве альтернативы рыбной муке в рационе дорады, Sparus aurata , молоди. Аквакультура 431, 34–43. doi: 10.1016/j.aquaculture.2014.05.010

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Велтер, Д. К., Руо, А., Henseler, Z.M., De Jong, H.N., van Coeverden, de Groot, P., et al. (2021). Свободноживущие психротрофные бактерии рода Psychrobacter являются потомками патобионтов. mSystems 6:e00258-21.

Академия Google

Сюэ Дж., Шен К., Ху Ю., Ху Ю., Кумар В., Ян Г. и др. (2020). Влияние пищевых добавок Bacillus cereus , B. subtilis, Paracoccus marcusii и Lactobacillus plantarum на рост, иммунный ответ, антиоксидантную способность и здоровье кишечника молоди белого амура ( Ctenopharyngodon idellus ). Аквакульт. Респ. 17:100387. doi: 10.1016/j.aqrep.2020.100387

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Итрестейл, Т., Аас, Т.С., и Осгард, Т. (2015). Использование кормовых ресурсов при производстве атлантического лосося ( Salmo salar ) в Норвегии. Аквакультура 448, 365–374. doi: 10.1016/j.aquaculture.2015.06.023

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Замани, А., Хаджави, М., Назарпак, М. Х., и Гисберт, Э. (2020).Оценка бактериального одноклеточного белка в составных рационах для мальков радужной форели ( Oncorhynchus mykiss ) в качестве альтернативного источника белка. Животные 10:1676. дои: 10.3390/ani10091676

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Чжан, Л. С., и Дэвис, С.С. (2016). Микробный метаболизм пищевых компонентов в биоактивные метаболиты: возможности для новых терапевтических вмешательств. Геном Мед. 8:46.

Академия Google

Чжан, Л., Li, Q., Chen, C., Li, X., Li, M., Hu, J., et al. (2017). Propioniciclava sinopodophylli sp. Nov., выделен из листьев Sinopodophyllum hexandrum (royle) ying. Междунар. Дж. Сист. Эвол. микробиол. 67, 4111–4115. doi: 10.1099/ijsem.0.002265

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Чжао, Л., Ван, В., Хуан, X., Го, Т., Вэнь, В., Фэн, Л., и другие. (2017). Влияние замены рыбной муки дрожжевым экстрактом на усвояемость, рост и мышечный состав креветки Litopenaeus vannamei . Аква. Рез. 48, 311–320. doi: 10.1111/are.12883

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

.